A. 下列關於DNA粗提取與鑒定的說法正確的是（）A．析出DNA時要緩慢地加蒸餾水使氯化鈉濃度降低，然後過
A、析出DNA時要緩慢地加蒸餾水使氯化鈉濃度降低，待粘稠物不再增加為止，此粘版稠物即為DNA，因權此過濾後保留粘稠物，A錯誤；
B、在探究洗滌劑對植物細胞DNA提取的影響實驗中，自變數是否加洗滌劑，食鹽的用量屬於無關變數，B錯誤；
C、鑒定DNA用二苯胺時需要沸水浴加熱才能產生藍色，C錯誤；
D、由於蛋白質在高溫條件下易變性，而DNA對溫度的耐受性較強，因此將含有DNA的濾液放在60～75℃的恆溫水浴箱中保溫後過濾，能去除蛋白質雜質，D正確．
故選：D．
B. DNA的粗提取和鑒定為什麼要四次過濾第四次過濾有什麼用
1、實驗中兩次使用蒸餾水。
第一次百，取血細胞液時加蒸餾水，目的是讓血細版胞吸水權漲破
第二次是在析出含DNA的粘稠物後，目的是稀釋NACL溶液，使DNA逐漸析出
2、加3次NACL，
第一次，在溶解核內DNA時，加入NACL後充分攪拌，加速染色質中度DNA與蛋白質的分離，使DNA充分游離並融入NACL中
第二次在DNA粘稠物在溶解時，家NACL是使DNA再溶解
第三次是在DNA的鑒定中，目的是溶解DNA
3、過知濾3次
第一次在道提取血細胞核物質時進行過濾專，取得的濾液中含有染色質，而濾出的是細胞膜、核屬膜和細胞器等的破碎結構
第二次在濾去含有DNA粘稠物只能夠，濾液中含有仍然溶解在NACL中的細胞中的一些成分，如蛋白質等
第三次在過濾含DNA的2mol/L的NACL溶液時，過濾後的濾液中含有DNA
（三次過濾就行了，四次過濾是為了提取的更純而已，要求不高時，可以省略）
C. 在DNA的粗提取實驗中，將核內DNA溶解於2mol/L的NaCl溶液中後，緩緩加入蒸餾水直到絲狀物不再增加，此時如
在2mol/L的NaCl溶液中DNA溶解抄，緩緩加襲入蒸餾水使得NaCl溶液濃度降低，則DNA的溶解度降低不斷析出；DNA絲狀物不再增加時，此時NaCl溶液的濃度為0.14mol/L；如繼續加蒸餾水，DNA的溶解度增加，DNA絲狀物量減少．
故選：C．
D. 高中生物:為什麼錯 正確的方法是什麼在「析出DNA黏稠物」時，要緩緩加酒精，直至溶液中黏稠物不
步驟3：析出含DNA黏稠物：沿燒杯內壁緩慢加入蒸餾水，同時用玻璃棒沿一個方向內不停地輕輕攪拌。由於溶容液濃度的下降，使得DNA溶解度下降，蛋白質溶解度上升，DNA析出成白色絲狀黏稠物，當黏稠物不再增加時，停止加入蒸餾水。（這時溶液中NaCl的物質的量濃度相當於0.14 mol/L）
E. 有關實驗「DNA的提取及檢測」的問題
實驗准備工作：
1 所用離心管、槍頭要洗凈、烘乾（最好滅菌）。
2 試劑配製：
1 M Tris-HCl (pH 8.0): 稱取Tris-Base 121g, 加入約 ml 水在磁力攪拌器上攪拌，使其充分溶解後加入濃鹽酸調整pH至8.0後加水定溶至1000 ml. 滅菌後於室溫保存。
0.5 M EDTA (pH 8.0): 稱取EDTA-Na2鹽 187 g 加入約 800 ml水，在磁力攪拌器上邊攪拌邊加入固體NaOH，當EDTA和NaOH均完全溶解，溶液變清時其pH值剛好達到8.0左右，再用pH試紙略加調整即可, 滅菌後於室溫保存。
5.0 M NaCl: 稱取NaCl 300 g, 加入蒸餾水約800 ml 於磁力攪拌器上充分攪拌，約5分鍾後停止攪拌，靜止2~3分鍾，倒出上清液，再加入100 ml蒸餾水重復前面的步驟，直到NaCl充分溶解後定溶至1000 ml., 滅菌後於室溫保存。
酚：氯仿：異戍醇（25：24：1）的配製：可參考《分子克隆》亦可按如下方法配製取重蒸酚100 ml ，蒸餾水50 ml，8-羥基喹嚀0.05g 加入500 ml玻璃燒杯於磁力攪拌器上邊加熱邊攪拌，待酚達到水飽和後加入18 g Tris-Base，等Tris-Base 完全溶解後加入100 ml氯仿：異戌醇（24：1），攪拌10~20分鍾，靜止約10分鍾，除去上層水相後，裝入棕色瓶，最後加入20 ml 0.1M的Tris-HCl保護液於4℃保存。
DNA Buffer的配製：
1 M Tris-HCl (pH 8.0)
100 ml
0.5 M EDTA (pH 8.0):
100 ml
5.0 M NaCl:
300 ml
H2O
500 ml
滅菌後於室溫下保存3個月左右，用時按1.5%往Buffer中加入CTAB，在電爐上燒開；在通風櫥里加入1%的巰基乙醇( 現配現用)。
DNA的提取：
1 取2~5 g葉片或愈傷組織，加入適量液氮研碎，轉入預冷的50ml離心管，加入20 ml DNA提取緩沖液充分搖勻，於65℃水浴60~90 min，中途輕輕搖勻兩次。
2 加入15 ml 氯仿：異戍醇（24：1）輕輕搖勻10分鍾，於BECKMAN離心機中4000 rpm離心15分鍾。
3 取上清液於另一50 ml離心管加入10 ml 氯仿：異戍醇（24：1）重復步驟2。
4 吸上清液於一干凈的50 ml 離心管，加入15 ml 冷凍的異丙醇，輕輕搖勻後於-20℃冷凍半小時，4000 rpm離心10分鍾。棄上清液，加入5 ml 76%的乙醇（含10 mM
NH4Ac）浸泡5 h（或過夜），中途換乙醇2-3次。
5 棄乙醇風干沉澱約半小時，加入3.0 ml TE緩沖液（10 mM Tris-HCl pH 8.0；1 mM EDTA , pH 8.0），20 µl RNase A（10 mg/ml），37℃溫浴過夜。
6 溶液轉入一10 ml離心管，加入3.0 ml苯酚：氯仿：異戊醇（25：24：1）充分顛倒混勻，4000 rpm離心15 min，吸上清液於另一10 ml的離心管中，（可重復一次）。
7 加入1 ml 5.0 M的NaCl和3.0 ml水飽和乙醚，充分混勻，4000 rpm離心5 min。
8 棄乙醚，用20 µl槍頭擋住離心管管口內側，用力下壓槍頭，使槍頭與管壁間形成一狹縫，讓下清液從縫中流入另一10 ml離心管。
9 加入5 ml冷凍的異丙醇，輕輕搖勻後於-20℃冷凍半小時，4000 rpm離心10分鍾。棄上清液，加入3 ml 70%的乙醇浸泡4~6 h（或過夜），中途換乙醇2-3次。風干乙醇，加入500 µl TE溶解，或浸在乙醇中長期保存。
DNA檢測
1 取DNA原液15 µl稀釋至3.0 ml，用UV-1601型紫外分光光度計測定230 nm、 260 nm及280 nm的吸光值。
高質量的DNA要求：A260/A230>2.0； 1.7<A260/A280<1.9
2 將DNA原液適當稀釋後，用1 Χ TAE，0.8%瓊脂糖凝膠2V/cm電泳1 h進行質量檢測。
3 向一定量的DNA中加入限制性內切酶EcoR I至4-5U/μg DNA，37℃消化過夜，用0.5 Χ TBE，0.8%瓊脂糖凝膠2.5V/cm電泳3 h進行檢測。
CTAB法微量提取DNA
1. 葯品的配製:
CTAB提取液：
(1)100mM Tris-HCl(PH 8.0),1.5M NaCl,50mM EDTA(PH 8.0)
(2)1% PVP,2% CTAB
(3)取少許(1)加到(2)中，攪拌成糊狀,後加(1)至足量,65℃水浴充分溶解備用。使用前要在65℃溫浴一會兒，然後加入1-4%巰基乙醇,混均勻。
苯酚：氯仿：異戊醇（25∶24∶1）： 重蒸酚65℃水浴溶解，在燒杯中加入80ml溫熱的蒸餾水，加入少許8-羥基喹啉，溶解後加入100ml重蒸酚，再加入100ml氯仿：異戊醇（24：1），加入20克Tris Base，磁力攪拌器上攪拌1.5 h左右至停止攪拌後很快分層，然後裝入棕色瓶中，4℃冰箱中儲存備用。
2. 材料的採取與保存：
在超凈工作台上，取試管苗葉片，放入無菌的1.5 ml離心管中，置於冰盒中，然後把裝有葉片的離心管一起裝在紗布袋中，置液氮中冷凍10分鍾，取出後置於—70℃冰箱中可長期保存，需要用時，取出置於冰盒中。
3．DNA的粗提
在裝有葉片的離心管中加入石英砂少許（約0.07克），用事先滅過菌的—20℃冰箱中預冷的尖頭玻棒將材料戳到底部，先壓後研磨，研細後加入600 ul CTAB提取液，再繼續研磨一會兒使其懸浮均勻，然後在65℃水浴鍋中溫浴60-90分鍾，隔30分鍾取出上下輕輕顛倒幾次，水浴之後，加入700ul苯酚：氯仿：異戊醇（25：24：1），，上下晃動10分鍾以上，其間置於37℃水浴鍋中溫浴一會（冬季），使之充分混勻，然後10000-12000rpm離心5-10分鍾，吸取上清液轉至另一離心管中，加入60 ul 5M NaCl，再加入-20℃冰凍無水乙醇1ml，輕輕顛倒數次，混合均勻後冰凍30分鍾沉澱DNA，然後8000-10000rpm離心5分鍾，棄上清液，加入1 ml 70%酒精浸泡2小時或過夜，8000rpm離心5分鍾,棄酒精之後在工作台上風干DNA，注意不要過干，否則會使以後溶解困難。
4. DNA的純化：
向風干後的DNA中加入500 ul 1xTE，37℃水浴15-30分鍾至DNA完全溶解，然後加入700ul苯酚：氯仿：異戊醇（25：24：1），上下顛倒離心管約10分鍾，至充分混勻，其間置於37℃水浴鍋中溫浴一會（冬季）；10000-12000 rpm離心5分鍾，吸取上層液至另一離心管中，加入700ul氯仿：異戊醇（24：1），顛倒10分鍾（方法同上），10000 -12000rpm離心5分鍾，吸取上層液至另一離心管中，加入60 ul 5M NaCl，再加入1ml冷凍的無水乙醇，輕輕顛倒，然後在-20℃冰箱中置30分鍾沉澱DNA，8000-10000 rpm離心2-3分鍾，使DNA分散狀緊貼在管壁上，棄酒精，加70%酒精1ml浸泡,2小時後換一次,後浸泡過夜，8000rpm離心3分鍾後棄酒精，風干，加50-100ul1xTE充分溶解，然後每管加5ul 5mg/ml Rnase,37℃水浴6小時或過夜。
5. DNA檢測:
（1）0.8%瓊脂糖凝膠電泳30-60分鍾：
TAE 100ml，EB 30ul，樣品3-5ul，電壓90V，
觀察A：DNA是否跑出，帶型是否整齊劃一；B：RNA是否除盡
（2）分光光度計檢測D260/D280的比值：在1.8-2.0的范圍內認為純度較高上述方法提取的DNA比值在1.65-1.95之間。濃度=30000xOD260（DNA樣品為5ul時）。
不知道你說的是動物的還是植物的，我當年做的是動物的。用的是雞血，因為在學校，沒有生物書，只能粗略的查一下了
1、實驗中兩次使用蒸餾水。
第一次，取血細胞液時加蒸餾水，目的是讓血細胞吸水漲破
第二次是在析出含DNA的粘稠物後，目的是稀釋NACL溶液，使DNA逐漸析出
2、加3次NACL，
第一次，在溶解核內DNA時，加入NACL後充分攪拌，加速染色質中DNA與蛋白質的分離，使DNA充分游離並融入NACL中
第二次在DNA粘稠物在溶解時，家NACL是使DNA再溶解
第三次是在DNA的鑒定中，目的是溶解DNA
3、過濾3次
第一次在提取血細胞核物質時進行過濾，取得的濾液中含有染色質，而濾出的是細胞膜、核膜和細胞器等的破碎結構
第二次在濾去含有DNA粘稠物只能夠，濾液中含有仍然溶解在NACL中的細胞中的一些成分，如蛋白質等
第三次在過濾含DNA的2mol/L的NACL溶液時，過濾後的濾液中含有DNA
F. dna的粗提與鑒定實驗為什麼加入2m的nacl後不過濾就加蒸餾水 博客
1、實驗中兩次使用蒸餾水。
第一次，取血細胞液時加蒸餾水，目的是讓內血細胞吸水漲破
第二次是容在析出含DNA的粘稠物後，目的是稀釋NACL溶液，使DNA逐漸析出
2、加3次NACL,
第一次，在溶解核內DNA時，加入NACL後充分攪拌，加速染色質中DNA與蛋白質的分離，使DNA充分游離並融入NACL中
第二次在DNA粘稠物在溶解時，家NACL是使DNA再溶解
第三次是在DNA的鑒定中，目的是溶解DNA
3、過濾3次
第一次在提取血細胞核物質時進行過濾，取得的濾液中含有染色質，而濾出的是細胞膜、核膜和細胞器等的破碎結構
第二次在濾去含有DNA粘稠物只能夠，濾液中含有仍然溶解在NACL中的細胞中的一些成分，如蛋白質等
第三次在過濾含DNA的2mol/L的NACL溶液時，過濾後的濾液中含有DNA
G. DNA能溶於蒸餾水嗎
在2mol/L的NaCl溶液中DNA溶解，緩緩加入蒸餾水使得NaCl溶液濃度降低，則DNA的溶解度降低不斷析出；DNA絲狀內物不再增加時，容此時NaCl溶液的濃度為0.14mol/L；如繼續加蒸餾水，DNA的溶解度增加，DNA絲狀物量減少．故選：C．
H. DNA的粗提取與鑒定怎麼做！
實驗原理：
1.析出溶解在NaC1溶液中的DNA。
2.用冷酒精提取出含雜質較少的DNA。
3.DNA在沸水浴時被專二苯屬胺染成藍色。
方法步驟：
1．提取細胞核物質：順時針方向攪拌，稍快，稍重。 5 min
2．溶解DNA：
3．析出含DNA的黏稠物：蒸餾水300mL，逆時針方向攪拌，緩慢
4．過濾：取黏稠物
5．再溶解：順時針方向攪拌，較慢。3 min
6．過濾：取濾液。
7．提取出含雜質較少的DNA，逆時針方向攪拌，稍慢。5 min
8．DNA的鑒定：沸水浴5min
I. DNA的粗提取實驗中,先後兩次加入蒸餾水的作用分別是
選C.第二次降低NaCl溶液濃度是為了讓DNA析出。100%正確！