离子交换色谱和疏水作用色谱区别

① 从分析原理简述hplc中，离子交换色谱，离子对色谱及离子色谱有何异同

离子色谱原理与离子交换色谱原理类似，离子色谱后一般使用电化学内检测器进行检测，适容用于分析无机与有机阴阳离子和氨基酸，以及糖类和DNA、RNA的水解产物等；离子对色谱主要是补充离子抑制色谱的不足，离子抑制色谱是指在流动相中加入弱酸或弱碱来抑制待测组分的离解，提高k值以利于组分的分离，一般针对酸性待测组分，可在流动相中加入弱酸，使待测组分减少在流动相中的离解，加强与固定相的分配，适用于有机弱酸碱或两性化合物的检测，但由于色谱柱一般是硅胶基质化学键合相色谱，其酸度耐受范围是2-8，因此在加入酸碱调节剂时还要兼顾流动相pH，导致无法通过此方法分析强酸强碱，因此引入离子对色谱，在流动相中加入可与强酸强碱抑制的离子对，通常分析碱加入烷基磺酸钠，分析酸加入季胺盐，适用于较强有机酸碱的分析。

② 简述凝胶过滤，离子交换和亲和色谱之间的区别

凝胶过滤色谱法：分辨率较高，但是上样量仅为柱体积的1%，而且对流速也有严格的限制。回
离答子交换色谱法：根据目的蛋白质表面所含有的氨基酸残基带有的净电荷分离蛋白质，但是分辨率没有凝胶过滤高。
亲和层析法：根据生物分子的特异性分离目的蛋白，特异性很高，但是配件容易丢失 适合含有特异性的标签的或者抗体。
疏水色谱：根据疏水性来分离蛋白质,缺点是有的蛋白质在高盐中溶解度降低，所以应用范围受到限制，适合蛋白质表面含有较多疏水性氨基酸残基的疏水性蛋白质。

③ 离子交换色谱法,离子色谱法,离子对色谱法三者的区别

离子色谱是高效液相色谱的一种，故又称高效离子色谱（HPIC）或现代离子色谱回，其有别于答传统离子交换色谱柱色谱的主要是树脂具有很高的交联度和较低的交换容量，进样体积很小，用柱塞泵输送淋洗液通常对淋出液进行在线自动连续电导检测。
离子对色谱法：不懂

④ 常用的蛋白质分离纯化方法有哪几种各自的作用原理是什么

常用的蛋白质纯化方法有离子交换色谱、亲和色谱、电泳、疏水色谱等等

1. 离子交换色谱：蛋白质和氨基酸一样会两性解离，所带电荷决定于溶液pH。pH小于pI时蛋白质带正电，pH大于pI时蛋白质带负电。不同蛋白质等电点的蛋白质在同一个溶液中，表面电荷情况不同。离子交换就是利用不同蛋白质在同一溶液中表面电荷的差异来实现分离的。

2. 亲和色谱：生物大分子有一个特性，某些分子或基因对它们有特异性很强的吸附作用。如镍柱中Ni可以与His标签的蛋白结合，这种只针对一种或一类物质的吸附就是亲和色谱的原理。

3. 电泳：SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，SDS能断裂分子内和分子间氢键，破坏蛋白质的二级和三级结构，强还原剂能使半胱氨酸之间的二硫键断裂，蛋白质在一定浓度的含有强还原剂的SDS溶液中， 与SDS分子按比例结合，形成带负电荷的SDS-蛋白质复合物，这种复合物由于结合大量的SDS，使蛋白质丧失了原有的电荷状态形成仅保持原有分子大小为特征的负离子团块，从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然的电荷差异，由于SDS与蛋白质的结合是按重量成比例的，因此在进行电泳时，蛋白质分子的迁移速度取决于分子大小。

4. 疏水色谱：疏水色谱基于蛋白质表面的疏水区与介质疏水配体间的相互作用，在高浓度盐作用下，蛋白质的疏水区表面上有序排列的水分子通过盐离子的破坏被释放，裸露的疏水区与疏水配体相互作用而被吸附。疏水色谱就是利用样品中各组分在色谱填料上配基相互作用的差异，在洗脱时各组分移动速度不同而达到分离的目的。随着盐离子浓度的降低，疏水作用降低，蛋白质的水化层又形成，蛋白质被解吸附。
   

⑤ 分配色谱，吸附色谱和离子交换色谱各是什么它们的区别

吸附色谱

吸附色谱利用固定相吸附中对物质分子吸附能力的差异实现对混合物的分离，吸附色谱的色谱过程是流动相分子与物质分子竞争固定相吸附中心的过程

吸附色谱的分配系数表达式如下：

⑥ HPLC的常用术语解释

高效液相色谱法(HPLC)又称“高压液相色谱”、“高速液相色谱”、“高分离度液相色谱”、“近代柱色谱”等。它是在生化和分析化学中常用的柱层析仪。接下来我为大家整理了HPLC的常用术语解释，希望对你有帮助哦!

第一部分色谱曲线

1、色谱图(chromatogram)：色谱柱流出物通过检测器系统时所产生的响应信号对时间或流动相流出体积的曲线图，或者通过适当的 方法 观察到的纸色谱或薄层色谱斑点、谱带的分布图。

2、(色谱)峰(chromatographic peak)：色谱柱流出

3、峰底(peak base)：峰的起点与终点之间的连接的直线

4、峰高(h ，peak height)：色谱峰最大值点到峰底的距离(图1 中的BE)。

5、峰宽(W ，peak width)：在峰两侧拐点(图1 中的F ，G)处所作切线与峰底相交两点的距离

6、半高峰宽(W h/2 ，peak withd at half height)：通过峰高的中点作平行于峰底的直线，此直线与峰两侧相交两点之间的距离(图1 中的HJ)。

7、峰面积(A ，peak area)：峰与峰底之间的面积

8、拖尾峰(tailing peak)：后沿较前沿平缓的不对称的峰。

9、前伸峰(leading peak)：前沿较后沿平缓的不对称的峰。(又叫伸舌峰、前延峰)

10、假峰(ghost peak)：除组分正常产生的色谱峰外，由于仪器条件的变化等原因而在谱图上出现的色谱峰，即并非由试样所产生的峰。这种色谱峰并不代表具体某一组分，容易给定性、定量带来误差。(又叫鬼峰)

11、畸峰(distrorted peak)：形状不对称的色谱峰， 前伸峰、拖尾峰都属于这类。

12、反峰(negative peak)：也称倒峰、负峰，即出峰的方向与通常的方向相反的色谱峰。

13、原点(origin)：纸或薄层板上滴加试样部位的中心点

14、斑点(spot)：平面色谱法中，组分在展开和显谱后呈现近似圆形或椭圆形的色区

15、区带(zone)：在色谱柱、纸或薄层板上被分离组分所占的区域。

16、复斑(multiple spot)：一种组分展开后形成两个或多个清晰斑点。

17、区带拖尾(zone tailing)：由于物理、化学等作用的影响，一种组分在展开后形成的彗星形状斑点。

18、基线(base line)：在正常操作条件下，仅有流动相通过检测器系统时所产生的响应信号曲线。

19、基线漂移(baseline drift)：基线随时间定向的缓慢变化。

20、基线噪声(N，baseline noise)：由于各种原因而引起的基线波动。

21、统计矩(moment)：色谱流出曲线是组分在检测器中浓度或质量依时间的统计分布曲线，响应值对应于分布密度。组分在柱内迁移时间r次幂的数学期望称为流出曲线的r阶原点矩。而组分在柱内迁移时间与平均迁移时间差的r次幂的数学期望称为流出曲线的r阶中点矩。

22、一阶原点矩(first origin moment)：组分在柱内迁移时间的数学期望。当流出曲线为对称峰时，即为组分的保留时间。

23、二阶中心矩( μ2 ，second central moment)：二阶中心矩为流出曲线的方差。定义为：μ2=E(t-Et)2 式中，E代表平均。

24、三阶中心矩(μ3 ，third central moment)：定义为：μ3=E(t-Et)3

可以表示流出曲线的不对称程度。峰形对称时μ3=0，前伸峰μ3<0，拖尾峰μ3>0.

第二部分分离模式

1、液相色谱法(liquid chromatography ，LC)：用液体作流动相的色谱法。

2、液液色谱法(liquid liquid chromatography，LLC )：将固定液涂渍在载体上作为固定相的液相色谱法。

3、液固色谱法(liquid solid chromatography，LSC )：用固体(一般指吸附剂)作为流动相的液相色谱法。

4、正相液相色谱法(normal phase liquid chromatography ，NPLC)：固定相的极性较流动相的极性强的液相色谱法。

5、反相液相色谱法(reversed phase liquid chromatography，RPLC )：固定相的极性较流动相的极性弱的液相色谱法。

6、柱液相色谱法(liquid column chromatography )：在柱管内进行组分分离的液相色谱法。

7、高效液相色谱法(high performance liquid chromatography，HPLC )：具有高分离效能的柱液相色谱法。

8、尺寸排除色谱法(size exclusion chromatography，SEC )：用化学惰性的多孔性物质作为固定相，试样组分按分子体积(严格来讲是流体力学体积)进行分离的液相色谱法。

9、凝胶过滤色谱法：(gel filtration chromatography )：水或水溶液作为流动相的体积排除色谱法。

10、凝胶渗透色谱法：(gel permeation chromatography ，GPC)：有机溶剂作为流动相的体积排除色谱法。

11、亲和色谱法(affinity chromatography )：用连接在基体上的配位体做固定相，使其与蛋白质或其他大分子发生可逆的高选择性的相互作用，利用不同亲和力进行分离的液相色谱法。

12、离子交换色谱法(ion exchange chromatography ，IEC)：以离子交换作用分离离子型化合物的液相色谱法。

13、离子色谱法(ion chromatography )：以含有某种特定离子的水溶液作为流动相，流出液通过抑制柱(或不通过抑制柱)，在降低流动相背景信号的条件下用于分离离子的液相色谱法。

14、离子抑制色谱法(ion suppression chromatography )：通过调节流动相的PH值来抑制试样组分的电离，以分离离子型化合物的液相色谱法。

15、离子对色谱法(ion pair chromatography )：用形成离子对化合物进行分离的液相色谱法。16、疏水作用色谱法(hydrophobic interation chromatography )：用适度疏水性的固定相，以含盐的水溶液作为流动相，借疏水作用分离生物大分子化合物的液相色谱法。

17、制备液相色谱法(preparative liquid chromatography)：用能处理较大量试样的色谱系统，进行分离、切割和收集组分，以提纯化合物的液相色谱法。

18、平面色谱法(planar chronatography)：在平面介质上进行组分分离的色谱法，也叫平板色谱法。

第三部分 常用术语

M：分子量

MC：二氯甲烷(methylene chloride)

MeOH：甲醇(methanol)

MS：质谱

h：峰高

HPLC：高效液相色谱

ID：内径，dC

A：吸收度(式3.1，3.2);也作面积

ACN：乙腈(acetonitrile)

B(%B)：二元流动相中的强溶剂(% v/v)

C8，C18：烷基键合相的键长度(八烷基或十八烷基)

CD：环糊精(cyclodextrin)

CV：变异系数(通常以%表示);式15.3

dC：色谱柱内径(cm)

dP：颗粒直径(μm)

DAD：二极管阵列检测器

EC：电化学(检测器)

F：流速(ml/min)

FL：荧光(检测器)

GS：梯度斜度参数(式8.2a);k*=20/GS

IEC：离子交换色谱(ion-exchange chromatography)

IPC：离子对色谱 (ion-paire chromatography)

k：保留因子(式2.4)

k*：梯度洗脱中，k的有效值或平均值(式8.1)

ka，kZ：色谱图中，首峰(a)和末峰(z)的k值

L：色谱柱长度(cm)

LC-MS：液相色谱-质谱

MTBE：甲基-叔-丁醚(methyl-t-butyl ether)

N：色谱柱塔板数(式2.82.8b)

N：噪音(式3.3，图3.3)

NARP：非水反相HPLC

NPC：正相色谱

P：色谱柱压力降(通常以psi表示)(式2.9)

pKa：酸或供质子碱的酸性常数

PAH：多环芳烃(polyaromatic hydrocarbon)

RS：分离度(式2.1)

RI：折光指数

RPC：反相色谱

S：信号;式3.3;图3.3;以及由式6.1定义的参数

tD：延迟或滞留时间(min，用于梯度洗脱中);等于VD/F

tG：梯度时间(min)

tR：保留时间(min)(图2.2);等于tO(1+k)

tRa，tRz：色谱图中首峰(a)与末峰(z)的保留时间，tR(min)(图8.6a)

tO：色谱柱死时间(min)(式2.5)

t1，t2：相邻谱峰1与谱峰2的保留时间(min)

TEA：三乙胺(triethylamine)

THF：四氢呋喃(tetrahydrofuran)

UV：紫外光谱

VD：延迟或滞留体积(mL);为梯度混合器与色谱柱人口之间的体积(包括混合器的体积)

Vm：色谱柱死体积(mL)(式2.6);Vm为色谱柱内部的流动相体积，不包括附于固定相上的溶剂

Vmax：最大样品体积(mL)(式13.1)

Va：样品体积(mL)

w：重量(mg);也作半峰高处的峰宽(min)

wmax：不超载色谱柱的最大进样量(mg)(式2.17)

wS：色谱柱的饱和容量(mg)(式13.4)

W：峰底宽(min)(图2.2)

Wth：大进样量对峰底宽的贡献(min)(式13.2)

WO：小进样量的峰底宽(min)

W1/2：半峰高处的峰宽(min)(图1.1)

a：分离因子，等于k2/k1，其中k2与k1分别为相邻谱峰2和谱峰1的k值

△tR：tRz-tR(min)

△%B：梯度洗脱期间，%B的变化

ε：摩尔吸收系数

εo：正相HPLC 中溶剂或溶剂混合液的强度

η：粘度(CP)

<<不常有符号>>

A，B，C：式2.11中的常数;数值A，B与C随k值而变化，但改变 其它 条件或溶质时基本不变

A，B，C：式2.10中的常数;数值A，B与C随条件和样品而变化

A，B，C：式2.10a中的常数;数值A，B与C随条件和样品而变化

C：谱峰最大值处的浓度(mol/L)

CO：注入样品中溶质的浓度(mol/L)

GI：化学电离(MS)

DGA：N，N-二甲基-1-萘酰胺;(也作二甲基苯胺dimethylaniline)

EI：电子电离(MS)

ELS：蒸发光散 射击 (Evaporative light scattering)

EtOAc：乙酸乙酯(ethyl acetate)

FAB：快速原子轰击(MS)

FD：场解吸附(MS)

h：折合板高，等于H/dP(式2.11)

HB：羟基苯甲酸(hydrxybenzoic acid)(图7.8，7.17与7.19)

HFBA：七氟丁酸(hyptafluorobutyric acid)

IPA：异丙醇(isopropanol)

kW：以水作为流动相的k值(式6.1)

LCEC：液相色谱电化学检测器

LD：激光解吸(MS)

LSIMS：液态二级离子质谱

MALDI：基质辅助激光解吸电离

MP：对羟苯甲酸甲酯

[P-]m：流动相中离子对试剂P-的浓度(mmol/L)

PAD：脉冲电流分析检测器

PBP：极性键合相

PD：等离子解吸(MS)

PP：对羟苯甲酸丙酯

PTH：乙内酰苯硫脲

R+，R-：分别为阴离子与阳离子离子交换色谱柱中的荷电功能基困(式7.4和7.5[如-N(CH3)3+和-SO3-]

RF：响应因子

TBA+：四丁基铵离子

tBME：见MTBE

TMS：三甲基硅烷(trimethylsilyl;也为C1)

TNB：1，3，5-三硝基苯(1，3，5-trinitrobenzene)

TOF MS：时间飞行质谱

TSP：热喷雾(MS)

u：流动相通过色谱柱的速度(cm/s);等于L/to

V：峰底宽(mL)

Vc：色谱柱内峰展宽对V的贡献;也作小样品量峰底宽(mL)(式2.16)

VR：保留体积(mL)

W：峰宽(min)(式2.12)

Wc，WS，：分别为色谱柱，进样器，连续管和流通池对W的贡献(min)

Wlc，Wfc：(式2.12)

X，X1，：无特征结构的溶质(图7.8，7.17和7.19)

X2，X3

XB：流动相中的B溶剂的摩尔分数

V：折合速度，等于udp/Dm(式2.11)

б：高斯曲线的标准偏差;等于峰底的1/4

ι：检测器响应时间常数(S)

φ：流动相中B溶剂的体积分数;等于0.0

⑦ 离子交换层析与疏水层析有何区别

离子交换层析是利用蛋白质在不同PH带不同种电荷的方法，利用离子交换的方法分离蛋白的。离子交换内的介质一般是树脂，阳离子交换型的，使用前树脂先用碱处理成钠型，将氨基酸混合液（pH=2-3)上柱，pH=2-3时，氨基酸主要以阳离子形式存在，与树脂上的钠离子发生交换而被“挂”在树脂上，再用洗脱剂洗脱。不同的氨基酸（带的电荷不同）与树脂的亲和力不同，要将其分离洗脱下来，需要降低它们之间的亲和力，方法是逐步提高洗脱剂的pH和盐浓度，这样各种氨基酸将以不同的速度被洗脱下来，反之亦然。不同反荷离子与树脂亲和力是不同的，其强弱关系为阳性竞争离子：Ag+〉CS+〉K+〉NH4+〉Na+〉H+〉Li+阴性竞争离子：I->NO3->(PO4)3->CN-〉HSO3-〉Mg2+〉HCO3-〉HCOO-〉CH3COO-〉OH-〉F-如果某种离子溶液洗脱效果不好，可用另一种亲和力强的离子代替之，等电点＞7选择阳离子交换树脂，等电点＜7选择阴离子交换树脂。

⑧ 离子交换层析与疏水层析有何区别

结合的作用力就不一样啊

离子交换层析是根据静电力不同而达到挂柱和洗脱的效果

而疏水层析是因为不同的物质与填料的疏水作用力不一样，洗脱时间不同，而达到分离的效果

⑨ 疏水相互作用色谱和亲和色谱的异同

疏水作用层析（Hydrophobic Interaction Chromatography，HIC）是根据分子表面疏水性差别来分离蛋白质和多肽等生物大分子的一种较为常用的方法。蛋白质和多肽等生物大分子的表面常常暴露着一些疏水性基团，我们把这些疏水性基团称为疏水补丁，疏水补丁可以与疏水性层析介质发生疏水性相互作用而结合。不同的分子由于疏水性不同，它们与疏水性层析介质之间的疏水性作用力强弱不同，疏水作用层析就是依据这一原理分离纯化蛋白质和多肽等生物大分子的。
反向液相色谱RPC
一般用非极性固定相（如C18、C8）；流动相为水或缓冲液，常加入甲醇、乙腈、异丙醇、丙酮、四氢呋喃等与水互溶的有机溶剂以调节保留时间。它是根据被测组分离子与离子对试剂离子形成中性的离子对化合物后，在非极性固定相中溶解度增大，从而使其分离效果改善。

疏水作用层析：溶液配置简单，性状温和，能保持蛋白活性，但操作复杂，分离效率低

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⑩ 离子交换色谱和疏水性相互作用色谱的洗脱原理有何异同

离子交换色谱法是利用离子交换原理和液相色谱技术的结合来测定溶液中阳离子和阴离子的一种专分离属分析方法。凡在溶液中能够电离的物质通常都可以用离子交换色谱法进行分离。现在它不仅适用于无机离子混合物的分离，亦可用于有机物的分离，例如氨基酸、核酸、蛋白质等生物大分子，因此应用范围较广。