西安pcr實驗室廢水處理

『壹』 PCR實驗室通風系統流程是什麼

PCR實驗室通常採用非單向流送風方式，所謂非單向流，指氣流流線方向不平行，風速也不一致。非單向流的氣流組織方式有上送下回式、上送下側回式、測送下回式、上送上回式、PCR實驗室一般採用上送下回式。上部送風依靠高效送風口進入房間，下部回風依靠每個房間的對稱分布的排風柱下部的排風口排風。
新風從室外進入處理機組，經過粗效、中效、亞高效、表冷(熱)段、噴淋段(加濕)幾個處理過程，然後進入潔凈室。
排風分為全面換氣與局部排風兩部分，全面排風口一般位於排風柱的下部，設可調帶過濾網的百葉風口，送風口採用高效過濾送風口。局部排風為房間設置Ⅱ級B2型生物安全櫃的局部排風，櫃面風速要求不小於5m/s，生物安全櫃獨立設置排風系統，排風口要求設置在建築物的屋面上，生物安全櫃排風管與所在室內的全面排風互鎖，局部排風與全面排風不能同時開啟。新風機組與排風系統都採用變頻系統，以應對不同變風量處理過程。
空氣過濾要求:
實驗室的送風經過凈化過濾，需達到國家規范要求，實驗室完工後，需經過測定送風顆粒物的濃度。顆粒物濃度不小於0.5μm，過濾效率95＜η＜99.9，阻力不大於120Pa，處理效率為大氣塵計數效率，滿足此要求，可達到PCR實驗室室內處理空氣標准，方可滿足實驗室使用要求。

『貳』 pcr實驗室的排水需要單獨處理嗎

pcr實驗室的排水有下水管道的是最好，一般都是從特殊處理的，沒有辦法的，只能直排了

『叄』 PCR實驗室的污染主要為哪些怎樣預防實驗室污染

把滅菌水、buffer、taq酶、引物全換掉，有段時間我們實驗室PCR總出現負對照擴出條帶，很難說哪個污染了，還不如全部換掉。其實普通PCR也不用像你說的那樣誇張吧，一般還是比較難污染的。

『肆』 PCR實驗室裝修供水系統需要怎麼設置

設置抄PCR實驗室供水系統，建襲議利用室外供水管網的壓力直接供水，具體方式為直接供水、高位水箱供水、加壓泵水箱供水。如果建築的低層與高層皆有實驗室，低層可由室外供水管網直接供水，而高層則用水箱或加壓泵水箱供水。還有，PCR實驗室供水系統的布置要做到用水點多且分散，這樣能起到平衡水壓的效果。其實PCR實驗室裝修供水系統還有很多需要注意的事項，我們公司當時找CEIDI西遞設置的時候，他們也花了不少時間和功夫。您要是有需求，可以先找他們咨詢一下，他家在實驗室裝修這方面已經有10多年經驗了，能滿足不同企業的需求。

『伍』 PCR實驗室污染如何預防

核酸實驗室污染的主要原因可能為：樣本污染、試劑污染、 環境污染、設回備污染和其他污染答。因此要避免污染，首先是預防，而不是排除。不規范的行為給實驗室的安全和污染埋下了隱患，從而影響檢驗結果的准確性。因此，有效的管理、規范的實驗室操作執行尤為重要。
找到一種全面測底的為高風險PCR實驗室消毒的方式成為必然。採用全球先進干霧技術打造的歐菲姆OXY-30000干霧過氧化氫消毒器，搭配諾福過氧化氫消毒液，可有效殺滅200多種有害微生物（已經取得國內殺滅冠 狀病毒的檢測報告）；高效消毒的同時，可以有效去除核酸污染，還可以消除芽孢、黴菌；應用簡單輕便，消毒完整不留死角，且作業時間短。

『陸』 PCR實驗室污染的原因有哪些

污染原因復：
1）標本制間交叉污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由於密封不嚴溢於容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由於吸樣槍污染導致標本間污染；有些微生物標本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。
2） PCR試劑的污染：主要是由於在PCR試劑配製過程中，由於加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。
3.）PCR擴增產物污染：這是PCR反應中最主要最常見的污染問題。因為PCR產物拷貝量大(一般為1013 拷貝/ml)，遠遠高於PCR 檢測數個拷貝的極限，所以極微量的PCR產物污染，就可造成假陽就可形成假陽性。
4）容易忽視，最可能造成PCR產物污染的形式是氣溶膠污染；在空氣與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，在操作時比較劇烈地搖動反應管，開蓋時、吸樣時及污染進樣槍的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染。據計算一個氣溶膠顆粒可含48000 拷貝，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。

『柒』 PCR實驗室廢水設備廠家能否提供一個需要具體的PCR實驗室廢水處理流程圖

中環清源--實驗室廢水處理流程

由廢水收集、自動調pH、自動加葯裝置、混凝氣浮裝專置、重金屬屬去除裝置、新型微電解裝置、電化學催化氧化處理裝置、臭氧催化氧化處理裝置、光催化氧化處理裝置、新型生物處理裝置、吸附過濾裝置、新型膜過濾裝置和復合消毒處理裝置等單元組成，形成一個完整的綜合廢水處理系統。

該系統針對不同的有機、無機、生物類廢水成分和濃度採用不同的處理技術和工藝進行綜合處理，可有效去除綜合廢水中的COD、BOD、SS、色度、病毒、有機溶劑和重金屬離子等。處理後的廢水可達標排放，亦可回收再利用。

『捌』 PCR實驗室污染了怎麼處理

出現污染後，我們首先考慮可能是試劑的污染，更換新批號的HBV試劑重新檢測後，結果仍為全部標本陽性。
將HBV標本拿到其他正規的PCR實驗室檢測，結果標本中陰、陽性結果都有，陰性對照是陰性，陽性對照是陽性，說明標本沒有被污染將兩種批號的HBV試劑拿到其他正規的PCR實驗室檢測，也顯示試劑沒有問題。
我實驗室用消毒液擦拭工作檯面後，打開所有的紫外燈照射一天，將所使用微量進樣器、離心管、槍頭、手套、記號筆、記錄本等都更換掉，再將HBV標本進行檢測，結果全部標本仍然為陽性。
用消毒液擦拭工作檯面後，打開所有的紫外燈照射一天，將HBV標本重新檢測，同時設置了兩個陰性對照(A和B)，A 陰性對照為將試劑的反應管從試劑盒中拿，打開反應管的蓋子，在空氣中暴露10 min，蓋上蓋子，上機檢測；B陰性對照為將試劑的反應管從試劑盒中拿，不開蓋子，直接上機檢測。結果是全部標本和A陰性對照為陽性，而B陰性對照為陰性。
至此，雖然還查找不到污染源是什麼，但有一點可以肯定，PCR實驗室污染是氣溶膠擴散而引起的後來經過調查，發現污染是由於本室工一位工作人員在打掃實驗室衛生時，用擴增區的掃笤和拖把打掃了標本制備區的衛生引起。

在確定了污染的原因後，我們就開始著手排除污染，每天都打開整個PCR 實驗室的門窗和排氣扇，讓整個實驗室通風，用消毒液擦拭整個PCR實驗室，打開所有的紫外燈照射。
每隔3 d按3．5步驟檢測一次，一直這樣處理了一個月，A陰性對照才轉為陰性。連續檢測三次A和B陰性對照，每次結果都均為陰性，才確定PCR實驗室恢復正常。

通常我們對PCR實驗室污染的預防是採取隔離不同操作區、分裝試劑、改進實驗操作等規則，對污染的處理是用稀鹽酸擦拭或浸泡；紫外線照射法等 ]。而對於實驗室的通風方面沒有給予足夠的重視，為了防止實驗區間之間的相互污染，各個實驗區間都是盡可能的密閉，從而使得實驗室出現PCR產物殘留污染的幾率增大。從本次PCR實驗室污染排除的過程來看．我覺得污染得以排除的一個關鍵是通風。適當的給予實驗室通風，可起到空氣稀釋的作用，有利於PCR產物殘留量的減少，加快實驗室污染的排除。

『玖』 PCR實驗室污染如何預防

1.PCR實驗室嚴格分區
整個檢測過程應嚴格分區進行：PCR反應體系的配置區，標本處理、加樣區，PCR擴增、熒光檢測及結果分析區。各區使用的儀器、設備、耗材和工作服應獨立專用。
2.進行PCR操作時，工作人員應該嚴格遵守SOP操作規程
操作人員應經過專業培訓，具有一定經驗和操作技能。
3.分裝PCR試劑
當使用的 PCR 試劑盒，不是獨立分裝的反應液時，應將PCR反應液先配置好，然後分裝到反應管-20℃保存，以減少重復加樣次數，避免污染。PCR試劑、PCR反應液與樣品及PCR產物分開保存，試劑盒裡面的陽性對照、陽性參考品也應該與試劑分開放置，不應放於同一冰箱。
4.正確使用加樣器
吸樣時要特別小心，應緩慢勻速，避免液體濺到加樣器頭上。盡量一次性吸完，忌反復多次抽吸，以免交叉污染或產生氣溶膠。打出液體後拇指不應松開按鈕，將吸嘴壓掉後再將拇指松開，避免液體回吸。
5.做好實驗室的清潔消毒
操作台、移液器、離心機、PCR擴增儀等儀器設備應經常用10%次氯酸或 75%酒精、紫外線燈或臭氧消毒處理。 特別是實驗完成後，應立即清潔工作台，並進行消毒。
6.做好實驗防護
使用不含熒光物質的一次性手套、一次性專用離心管、自卸式移液器和帶濾嘴吸頭。選擇質量好的離心管，以避免樣本外溢和外來核酸的進入，打開離心管前應先離心，將管壁及管蓋上的液體甩至管底部，以防止管內液體濺出，造成污染。反應管中盡量避免氣泡存在，管蓋應蓋緊。試劑准備和標本處理應使用超凈工作台或防污染罩，以防止對環境污染。

『拾』 怎麼防止PCR實驗室污染

PCR實驗室污染

標本間交叉污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由於密封不嚴溢於容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由於吸樣槍污染導致標本間污染;有些微生物標本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。

PCR試劑的污染：主要是由於在PCR試劑配製過程中，由於加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。

PCR擴增產物污染：這是PCR反應中最主要最常見的污染問題。因為PCR產物拷貝量大，遠遠高於PCR檢測數個拷貝的極限，所以極微量的PCR產物污染，就可造成假陽就可形成假陽性。

還有一種容易忽視，最可能造成PCR產物污染的形式是氣溶膠污染；在空氣與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，在操作時比較劇烈地搖動反應管，開蓋時、吸樣時及污染進樣槍的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染。

實驗室中克隆質粒的污染：在分子生物學實驗室及某些用克隆質粒做陽性對照的檢驗室，這個問題也比較常見，因為克隆質粒在單位容積內含量相當高，另外在純化過程中需用較多的用具及試劑，而且在活細胞內的質粒，由於活細胞的生長繁殖的簡便性及具有很強的生命力，其污染可能性也很大。

污染監測

一個好的實驗室，要時刻注意污染的監測，考慮有無污染是什麼原因造成的污染，以便採取措施，防止和消除污染。

對照試驗

1、陽性對照：在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照，它是PCR 反應是否成功、產物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。

2、陰性對照：每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括①標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定後的正常血清作對照；被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。②試劑對照：在PCR試劑中不加模板DNA或RNA，進行PCR擴增，以監測試劑是否污染。

3、重復性試驗

4、選擇不同區域的引物進行PCR擴增

防止污染的方法

進行PCR操作時，操作人員應該嚴格遵守一些操作規程，最大程度地降低可能出現的PCR污染或杜絕污染的出現。

劃分操作區：目前，普通PCR尚不能做到單人單管，實現完全閉管操作，但無論是否能夠達到單人單管，均要求實驗操作在三個不同的區域內進行，PCR的前處理和後處理要在不同的隔離區內進行：
1. 試劑准備區。
2．標本制備區。
3. PCR擴增區及分析區。

切記：任何一間的產物及器材不要拿到其他兩個工作區。

分裝試劑：PCR擴增所需要的試劑均應在生物安全櫃、裝有紫外燈的超凈工作台或負壓工作台配製和分裝。所有的加樣器和吸頭需固定放於其中，不能用來吸取擴增後的DNA和其他來源的DNA：
1．PCR用水應為高壓的雙蒸水；
2．引物和dNTP用高壓的雙蒸水在無PCR擴增產物區配製；
3．引物和dNTP應分裝儲存，分裝時應標明時間，以備發生污染時查找原因。

實驗操作注意事項

盡管擴增序列的殘留污染大部分是假陽性反應的原因，樣品間的交叉污染也是原因之一。因此，不僅要在進行擴增反應是謹慎認真，在樣品的收集、抽提和擴增的所有環節都應該注意：
1. 戴一次性手套，若不小心濺上反應液，立即更換手套；
2. 使用一次性吸頭，嚴禁與PCR產物分析室的吸頭混用，吸頭不要長時間暴露於空氣中，避免氣溶膠的污染；
3. 避免反應液飛濺，打開反應管時為避免此種情況，開蓋前稍離心收集液體於管底。若不小心濺到手套或桌面上，應立刻更換手套並用稀酸擦拭桌面；
4. 操作多份樣品時，制備反應混合液，先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好，然後分裝，這樣即可以減少操作，避免污染，又可以增加反應的精確度；
5. 最後加入反應模板，加入後蓋緊反應管；
6. 操作時設立陰陽性對照和空白對照，即可驗證PCR反應的可靠性，又可以協助判斷擴增系統的可信性；
7. 盡可能用可替換或可高壓處理的加樣器，由於加樣器最容易受產物氣溶膠或標本DNA的污染，最好使用可替換或高壓處理的加樣器。如沒有這種特殊的加樣器，至少PCR操作過程中加樣器應該專用，不能交叉使用，尤其是PCR產物分析所用加樣器不能拿到其它兩個區；
8. 重復實驗，驗證結果，慎下結論