细胞培养基浓缩需要超滤离心管

㈠ 超滤离心管怎么使用

蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。也有其它型号的、不同体积大小和MWCO超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mg/ml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的Buffer，直到蛋白不发生沉淀为止。
5、前面几步用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。
6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作，用黄枪头（200ul）取，轻轻顺着边缘插入枪头，轻轻吹打、混匀蛋白液，注意不要碰到超滤膜，然后吸取浓缩液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取，否则难度太大，有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中，没过超滤膜，防止膜失水变干。
7、以下是处理超滤管，重复利用超滤管的步骤。
8、倒出超滤管里的水，用milliQ水轻轻润洗几次，【若管底有可见的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用枪头吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀悬起，然后倒掉，不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液，室温放置20min，期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液，将管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时，不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗，内壁再用MilliQ水洗干净。
9、取出浸没的管芯，加至接近满的MilliQ水，50ml管也加满MilliQ水，将管芯慢慢放入50ml
离心管，排出部分水，然后盖上盖子，放4度保存，直到下次使用。一般来说，按照上述步骤和注意事项，每根管用三四年不会坏。

㈡ 病毒纯化，这些方法简单快捷一篇就懂

新型冠状病毒感染的肺炎疫情持续严峻，科研工作者致力于病毒分离与抗病毒药物的开发。病毒纯化是研究工作的关键步骤之一，以下介绍简便快速的病毒纯化流程，旨在为病毒研究提供帮助。

首先，破碎被病毒感染的细胞释放病毒。方法有冷冻-融化、匀浆、超声破碎或酶解，其中，需去除宿主核酸以保持病毒得率。Benzonase®核酸酶能够高效降解DNA和RNA，降低病毒损失。

其次，通过膜过滤澄清上清液，去除细胞碎片等杂质。默克的Millex®针头式滤器配备PVDF或PES膜，适用于病毒纯化，避免病毒损失。另外，Steriflip®过滤器的使用能够简化操作流程，提升安全性与效率。

对于病毒的后续纯化，采用离子交换或凝胶过滤等方法去除残余杂质，离子交换法操作简便，而凝胶过滤条件温和、回收率高，适合特异性强、杂质含量不高的病毒。

浓缩病毒的步骤中，超滤法成为首选，可同时实现浓缩与换液，操作简便快捷。默克提供包括Amicon® Ultra、Centricon® Plus-70与Amicon® stirred cells在内的一系列设备，满足不同需求。

最终，病毒样品通过0.22μm孔径微滤去除细菌，推荐Ultrafree® 系列微滤离心管，减少损失，操作简便，样本回收率高。

这些流程涵盖了病毒纯化的关键步骤，旨在助力病毒研究与抗病毒药物的开发，加速疫情对策的步伐。

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㈢ 超滤离心管可以灭菌吗

1、可以用70%的酒精消毒
2、如果是高温高压灭菌,要注意灭完菌后,管里面的超滤膜是处于湿润的状态,所以需要立即使用,因为膜湿润后就不能干

㈣ 怎样提取上清液用western blot测定上清液中细胞分泌的蛋白

这个还是有难度的，一般上清里分泌的目的蛋白很少。所以首先建议您用无血清培养基培养你的细胞。 收集上清比较简单，直接把上清收到离心管里，离心一下去掉细胞什么的，再用超滤管浓缩一下上清，不然的话上清还是太稀了。。

㈤ 超滤管分子量怎么算

1/3。超滤管为了得到高收率，所选滤膜的截留分子量MWCO选择所需截留分子大小的1/3，不超过目标分子量的一半。因此超滤管分子量所需截留分子大小的1/3这样来计算。超滤离心管常用于闷郑做细胞培养上清的蛋白浓缩的实验，它会有内管和外管的两个部拍罩或分，内管中是带有一定分子量的膜，当高速离心时，分子量袭伍比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了，分子量比它大的就截留在上面（即内管中），这就是超滤的原理。

㈥ 如何用蛋白浓缩管

选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，最常见的是Ultra-15（10kD）。

通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。认真阅读使用说明书，注意超滤膜对各种化学物质的耐受程度有所不同。

新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。

(6)细胞培养基浓缩需要超滤离心管扩展阅读：

超滤浓缩离心管，最新推出专利产品Hydrosart膜2K型，具有极低的蛋白吸附特性，高流速、高通量，是免疫球蛋白浓缩和脱盐的理想用膜。

备有四种材质的超滤膜：聚醚砜、三醋酸纤维素、再生纤维素和Hydrosart，可根据不同要求灵活选用；两种回收浓缩液的方法：既可用吸管直接吸取并回收，又可将离心管放入离心机反甩，将浓缩液甩入回收帽中，加盖保存。这两种方法都可使浓缩液达到近乎完全回收；

㈦ 超滤离心管如何选择以及使用方法

超滤离心管在蛋白质、DNA和生物分子的浓缩、纯化和脱盐过程中被广泛应用。选择和使用超滤离心管时，需要理解其与微滤的区别。

微滤（Microfiltration）利用微孔膜介质去除溶液中尺寸为0.1 μm至10.0 μm的颗粒或生物体，广泛应用于生物制药预过滤和除菌过滤。微滤在细胞实验中常用于样品和培养基灭菌，以及从细胞裂解物中去除完整细胞和碎片，确保下游应用结果准确性。

超滤（Ultrafiltration）通过压力或浓度梯度使料液通过半透膜进行分离，能截留尺寸范围为1-1000kDa的分子，并允许盐和水等小分子通过。它广泛应用于蛋白质溶液的分离和纯化，以及核酸样品制备，如分子克隆和质粒纯化。与沉淀法相比，超滤更为温和，避免生物大分子失活。

超滤离心管是一种利用离心力驱动溶液通过超滤膜进行快速浓缩、渗滤和缓冲液置换的装置，由盖子、过滤装置和离心管组成。通过选择适合的膜孔径，可进行除热源、澄清和分离大分子污染物，或浓缩和脱盐目标分子。

选择超滤离心管时，需考虑样品起始量及超滤膜的截留分子量（MWCO）。样品体积决定离心管尺寸，而截留分子量则需根据目标大分子的分子量选择，通常选择比目标分子小2-3倍的膜。

使用超滤离心管涉及准备、加样、离心和回收步骤。准备阶段需冲洗设备以消除甘油残留，然后在离心前加入适量纯水或缓冲溶液。离心前确保离心机转子平衡，以保持稳定。回收时，从过滤装置或离心管中轻轻提取样品，注意不要接触或损坏超滤膜。

遵循上述步骤，正确选择和使用超滤离心管，将有效实现蛋白质、DNA和生物分子的高效浓缩、纯化和脱盐，为科学研究和工业应用提供可靠支持。