超濾離心管洗滌保存

① 超濾離心管可以滅菌嗎

1、可以用70%的酒精消毒
2、如果是高溫高壓滅菌,要注意滅完菌後,管裡面的超濾膜是處於濕潤的狀態,所以需要立即使用,因為膜濕潤後就不能幹

② 想問一下超濾離心管怎麼使用啊還有它能不能重復使用

可以的,先用超聲波洗干凈,再用高壓滅菌鍋滅菌後,備用即可

③ 離心管怎麼清洗

用過的離心管大量清水沖洗-「84」消毒水浸泡過夜-沖洗-酒精浸泡過夜-沖洗-烘乾-擰上蓋子，但不要擰太緊-外麵包一層報紙-高壓滅菌-使用時從報紙里取出，在無菌台內擰緊蓋子，放到離心管架上即可。

④ 離心分離後，怎樣洗滌離心試管底部的沉澱

沉澱的洗滌、轉移和分離在裝有沉澱的離心管中加入適量洗滌液(少量多次)，用玻棒充分攪拌，可加熱，再離心分離。在洗凈沉澱試管中加入少量蒸餾水，攪動沉澱。

由於離心機等設備可產生相當高的角速度，使離心力遠大於重力，於是溶液中的懸浮物便易於沉澱析出：又由於比重不同的物質所受到的離心力不同，從而沉降速度不同，能使比重不同的物質達到分離。

對於兩相密度相差較小，黏度較大，顆粒粒度較細的非均相體系，在重力場中分離需要很長時間，甚至不能完全分離。若改用離心分離，由於轉鼓高速旋轉產生的離心力遠遠大於重力，可大大提高沉降速率，因此離心分離只需較短的時間即能獲得大於重力沉降的效果。

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當非均相體系圍繞一中心軸做旋轉運動時，運動物體會受到離心力的作用，旋轉速率越高，運動物體所受到的離心力越大。

在相同的轉速下，容器中不同大小密度的物質會以不同的速率沉降。如果顆粒密度大於液體密度，則顆粒將沿離心力的方向而逐漸遠離中心軸。經過一段時間的離心操作，就可以實現密度不同物質的有效分離。

不互溶的液體在離心機中因密度不同而很快分離。這種方法比重力分離時間要短得多。常用一種稱為離心萃取機的裝置來分離液體溶液組分。

該裝置由放置在圓筒轉鼓中的一系列多孔同心環組成，轉鼓環繞著一個筒形軸以每分鍾2 0005 000轉的速度旋轉，液體通過筒形軸進出，以徑向順流方式在轉筒中流動而達到液體溶液組分的分離。

⑤ 355618的離心管如何清洗

數字表示什麼？規格？很大？如果可能選擇超聲波清洗器，洗滌比較干凈，注意水溫和速度，應該能洗干凈，試試看吧

⑥ 離心後，怎麼洗滌離心管裡面的沉澱

加入水或酒精，繼續離心，倒出濾液，反復幾次。

⑦ 超濾濃縮離心管使用前要怎麼處理

可能不同廠家的產品保存運輸條件不一樣。
如果有甘油等保護劑，那就一定要洗干凈再加樣品。
乾的超濾管也要先潤濕再用，否則可能不能完全利用膜面積。
最好，用樣品buffer潤洗下再加樣，最大程度保證蛋白活性。尤其是用過後保存在NaOH或乙醇中後。
一般還是離心機甩一下好，使膜充分浸潤。
降低吸附的辦法有：
1，蛋白濃度不要過低
2，盡量選用纖維素的低吸附超濾管
3，用前可以用Tween
80等去垢劑潤洗（不影響蛋白活性的前提下）
4，加入保護蛋白，如BSA(不影響蛋白後續使用的前提下)
用完保存在20%
EtOH中，4C保存，防止長菌，依不同樣品可以重復使用不同的次數。

⑧ 超濾離心管怎麼使用

蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和MWCO超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。

⑨ 離心管和離心超濾管分別是做什麼用的,這個兩個有什麼區別!

離心管就是一個簡單的可以承受高轉速壓力的管子,比如離一些樣品,分離出上清沉澱專.離心超濾管會有一個屬類似於內管和外管的兩個部分,內管中是帶有一定分子量的膜,當高速離心時,分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了,分子量比它大的就截留在上面（即內管中）,就是超濾的原理.常用於濃縮樣品.