超濾離心管為什麼底部殘留液體

① 移液管操作時應注意什麼為什麼放完液體後要停留一定的時間最後留在管上的半滴液體如何處理為什麼

操作時要看清管上面是否標有要吹洗標志，若有，則滴加完後要用洗耳球吹洗一下，若無，則滴完後停留一段時間，其目的是使液體充分滴下，以免有未滴完的液體而影響溶液添加量，剩餘的半笭發蒂菏酈孤墊酞叮喀滴液體要輕觸容器壁，因為不需要吹洗的滴管流出多少液體就是你所取的溶液的量，這半滴也是應當滴出的量，不應屬於殘留量，不知道這樣解釋你是否明白，語文不好，有些慚愧；其次，在觀察時，要與視線平齊；洗耳球中的氣體要提前排出，否則容易混入雜質；吸取時不要過度，吸入洗耳球會造成污染；移液管在使用前要潤洗，用蒸餾水洗凈，潤洗三次，再用帶移取的液體潤洗三次。

② 為什麼移液管尖端仍殘留有一滴液體不可吹出

因為在製作移液管的過程中已經考慮了這一滴不吹下來的誤差，所以沒必要將那一滴吹下來

③ 求助：第一次使用超濾離心管應該怎麼處理

可能不同廠家的產品保存運輸條件不一樣。
如果有甘油等保護劑，那就一定要洗干凈再加樣品。版權
乾的超濾管也要先潤濕再用，否則可能不能完全利用膜面積。
最好，用樣品buffer潤洗下再加樣，最大程度保證蛋白活性。尤其是用過後保存在NaOH或乙醇中後。
一般還是離心機甩一下好，使膜充分浸潤。

降低吸附的辦法有：
1，蛋白濃度不要過低
2，盡量選用纖維素的低吸附超濾管
3，用前可以用Tween 80等去垢劑潤洗（不影響蛋白活性的前提下）
4，加入保護蛋白，如BSA(不影響蛋白後續使用的前提下)

用完保存在20% EtOH中，4C保存，防止長菌，依不同樣品可以重復使用不同的次數。

④ 超濾離心管可以滅菌嗎

1、可以用70%的酒精消毒
2、如果是高溫高壓滅菌,要注意滅完菌後,管裡面的超濾膜是處於濕潤的狀態,所以需要立即使用,因為膜濕潤後就不能幹

⑤ 絲素溶液用超濾離心管離心後為什麼有沉澱

那些沉澱是溶液中的蛋白析出啦。

⑥ 離心分離後，怎樣洗滌離心試管底部的沉澱

沉澱的洗滌、轉移和分離在裝有沉澱的離心管中加入適量洗滌液(少量多次)，用玻棒充分攪拌，可加熱，再離心分離。在洗凈沉澱試管中加入少量蒸餾水，攪動沉澱。

由於離心機等設備可產生相當高的角速度，使離心力遠大於重力，於是溶液中的懸浮物便易於沉澱析出：又由於比重不同的物質所受到的離心力不同，從而沉降速度不同，能使比重不同的物質達到分離。

對於兩相密度相差較小，黏度較大，顆粒粒度較細的非均相體系，在重力場中分離需要很長時間，甚至不能完全分離。若改用離心分離，由於轉鼓高速旋轉產生的離心力遠遠大於重力，可大大提高沉降速率，因此離心分離只需較短的時間即能獲得大於重力沉降的效果。

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當非均相體系圍繞一中心軸做旋轉運動時，運動物體會受到離心力的作用，旋轉速率越高，運動物體所受到的離心力越大。

在相同的轉速下，容器中不同大小密度的物質會以不同的速率沉降。如果顆粒密度大於液體密度，則顆粒將沿離心力的方向而逐漸遠離中心軸。經過一段時間的離心操作，就可以實現密度不同物質的有效分離。

不互溶的液體在離心機中因密度不同而很快分離。這種方法比重力分離時間要短得多。常用一種稱為離心萃取機的裝置來分離液體溶液組分。

該裝置由放置在圓筒轉鼓中的一系列多孔同心環組成，轉鼓環繞著一個筒形軸以每分鍾2 0005 000轉的速度旋轉，液體通過筒形軸進出，以徑向順流方式在轉筒中流動而達到液體溶液組分的分離。

⑦ 離心管和離心超濾管

離心管就來是一個簡單的可自以承受高轉速壓力的管子，比如離一些樣品，分離出上清沉澱。
離心超濾管會有一個類似於內管和外管的兩個部分，內管中是帶有一定分子量的膜，當高速離心時，分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了，分子量比它大的就截留在上面（即內管中），就是超濾的原理。。。。常用於濃縮樣品。

⑧ 超濾離心管怎麼使用

蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和MWCO超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。

⑨ 汽水分離器結構原理

MS9汽水分離器是採用高溫納米過濾濾清更加高效過濾去除蒸汽和壓縮空氣系統中夾帶的液滴場合，大量含水的蒸汽、壓縮空氣進入分離器並在其中以中立旋流離心向下傾斜變向運動。

由於氣體和液體的密度是不一樣的，如果兩者需要一起通過濾清的話，通常來說，液體就會被過濾到濾清上，而氣體就能通過。而且因為中立，氣體依舊會朝著原先的方向移動。而留在濾清上的液體就會分流至分離器的底部位置凝聚排出，從而提高氣體質量達到飽和氣體效果高達99.9%。

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一、種類

1、擋板型

擋板或折板式分離器由很多擋板構成，流體在分離器內多次改變流動方向，由於懸浮的水滴有較大的質量和慣性，當遇到擋板流動方向改變時，干蒸汽可以繞過擋板繼續向前。

而水滴就會積聚在擋板上，汽水分離器有很大的通流面積，減少了水滴的動能，大部分都會凝聚，最後落到分離器的底部，通過疏水閥排出。

2、汽旋型

汽旋或離心型分離器使用了一連串肋片以便產生高速氣旋，在分離器內高速旋轉流動的蒸汽。

3、吸附型

吸附型分離器內部的蒸汽通道上有一個阻礙物，一般是一個金屬網墊，懸浮的水滴遇到它後被吸附，水滴大到一定程度後，由於重力作用落到分離器底部。結合汽旋和吸附兩種形式的分離器也很常見，由於結合了這兩種方法整個分離效率會有所提高。

二、保溫效果

如果汽水分離器未進行保溫，由於表面散熱將會增加蒸汽的含水量，損失很多的熱量。假如蒸汽溫度為150℃，環境溫度為15℃，那麼增加保溫後每年將會節省8600MJ的熱量（假定是輻射傳熱，一年工作8760h），增加保溫後會節省相當多的能量，短時間內就能節省出加保溫的成本。

應使用專門保溫套，由於分離器的形狀特殊，尤其是法蘭連接時，保溫比較困難，使保溫效果受到了限制。

即使最好的保溫也不可能完全消除熱量損失，一般保溫效率為90%。使用專門為特殊的分離器設計的保溫套非常重要，否則保溫效率將下降。保溫良好的分離器也會減少入被燙傷的危險。

⑩ 想問一下超濾離心管怎麼使用啊還有它能不能重復使用

可以的,先用超聲波洗干凈,再用高壓滅菌鍋滅菌後,備用即可