㈠ 配置瓊脂糖膠時,可以用蒸餾水和高濃度的TAE液嗎
1.用蒸餾水將制膠工具洗干凈 准備好制膠平板 用瓊脂將模具邊緣封閉 架好梳回子
2.根據要分離的答樣品（DNA）大小配製合適濃度的瓊脂凝膠 准確的稱取一定量的瓊脂糖乾粉 加入到合適體積的錐形瓶中 加入一定量的電泳緩沖液（30ml左右TAE） 放入到微波爐內加熱融化 冷卻片刻（不燙手即可）
3.融化後的瓊脂溶液搖晃混勻 倒入電泳槽中 等其凝固
4.室溫下凝固30-40min左右 小心的拔出梳子 取出凝固好的凝膠放入電泳槽內 准備上樣
5.在電泳槽中倒入電泳緩沖液（TAE）沒過膠面1mm左右 去除膠孔內的氣泡
6.上樣 5ulDNA樣品加入1ul上樣緩沖液（loading buffer）和1ul的染料 用搶混勻後加入到凝膠孔內
.上樣結束 接通電源 紅色正極 黑色負極 DNA樣品有負極往正極運動 加樣孔側為負 40-50v電壓 電壓30敏左右即可（< 40min）
8.電壓結束 關閉電源 凝膠成像儀上觀察電壓位置並比對marker判斷大小
㈡ 粗多糖用蒸餾水能全部溶解嗎
一）苯酚法測定可溶性糖
【實驗原理】
植物體內的可溶性糖主要是指能溶於水及乙醇的單糖和寡聚糖。苯酚法測定可溶
性糖的原理是：糖在濃硫酸作用下，脫水生成的糠醛或羥甲基糠醛能與苯酚縮合
成一種橙紅色化合物，在10－100mg范圍內其顏色深淺與糖的含量成正比，且
在485nm波長下有最大吸收峰，故可用比色法在此波長下測定。苯酚法可用於
甲基化的糖、戊糖和多聚糖的測定，方法簡單，靈敏度高，實驗時基本不受蛋白
質存在的影響，並且產生的顏色穩定160min以上。
【實驗儀器及試劑】
1．儀器：分光光度計、電爐、鋁鍋、20mL刻度試管、刻度吸管、記號筆、吸
水紙適量。
2．試劑：
（1）90％苯酚溶液：稱取90g苯酚（AR），加蒸餾水10mL溶解，在室溫下
可保存數月。
（2）9％苯酚溶液：取3mL 90％苯酚溶液，加蒸餾水至30mL，現配現用。
（3）濃硫酸（比重1.84）。
（4）1％蔗糖標准液：將分析純蔗糖在80℃下烘至恆重，精確稱取1.000g。加
少量水溶解，移入100mL容量瓶中，加入0.5mL濃硫酸，用蒸餾水定容至刻度。
（5）100ug/L蔗糖標准液：精確吸取1％蔗糖標准液1mL加入100mL容量瓶
中，加水定容。
【實驗步驟】
1．標准曲線的製作： 取20mL刻度試管11支，從0－10分別編號，按表27
－1加入溶液和水，然後按順序向試管內加入1mL 9％苯酚溶液，搖勻，再從管
液正面以 5－20s。加入5 mL濃硫酸，搖勻。比色液總體積為8 mL，在恆溫下
放置30min。顯色。然後以空白為參比，在485nm波長下比色測定，以糖含量
為橫坐標，光密度為縱坐標，繪制標准曲線，求出標準直線方程。
2．可溶性糖的提取 取新鮮植物葉片，擦凈表面污物，剪碎混勻，稱取0.10－
0.30g，共3份，分別放入3支刻度試管中，加入5-10mL 蒸餾水，塑料薄膜封
口，於沸水中提取30min（提取2次），提取液過濾入25mL容量瓶中，反復沖
洗試管及殘渣，定容至刻度。
3．測定吸取0.5mL樣品液於試管中（重復2次），加蒸餾水1.5mL，同製作標
准曲線的步驟，按順序分別加入苯酚、濃硫酸溶液，顯色並測定光密度。由標准
線性方程求出糖的量，按下式計算測試樣品中糖含量。
式中：C一標准方程求得糖量（ug）
α一吸取樣品液體積（mL）
V－提取液量（mL）
n一稀釋倍數
W一組織重量（g）
可溶性糖含量（％）＝從標准曲線查得糖的量（μg）×提取液體積（ml）×稀
釋倍數/[測定用樣品液的體積(ml)×樣品重量(g)×106]×100
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粗多糖的檢驗方法
1、方法原理
粗多糖在硫酸的作用下，水解成單糖，並迅速脫水生成糖醛衍生物，與苯酚
縮合成有色化合物，用分光光度法測定樣品在粗多糖含量。
2、主要設備和儀器
設備721型分光光度計（上海第三分析儀器廠）
試劑
葡萄糖標准液：精確稱取105℃乾燥恆重的標准葡萄糖0.1000g，置100mL容量瓶中加熱蒸餾水溶解稀釋至刻度，其濃度為1.0mg/mL，用稀釋成濃度為0.1mg/mLd的標准工作液。
5%苯酚溶液：取苯酚100g，沙浴蒸餾，收集180℃-182℃溜分，稱取此餾分5g，用水溶解後，定容至100mL棕色容量瓶中備用（現用現配）。
3、測定步驟
3.1、最大吸收波長的選擇
精密吸取0.04mg/mL無水葡萄糖溶1.0 mL，置10mL具塞試管中，加入蒸餾水使體積為2.0mL，再加苯酚試液1.0mL，搖勻，迅速滴加濃硫酸5.0mL，搖勻後放置5min，置沸水浴中加熱15min，取出後冷卻至室溫。以蒸餾水代替糖溶液如加上法配製空白。用721分光光度計在470-510nm測定吸光度，測定最大吸收波長為490±nm。
3.2、標准曲線的繪制
精密吸收濃度為0.1mg/mL的葡萄糖標准標准工作液0、0.20、0.30、0.40、0.60、0.80mL，分別置於10mL具塞試管中，各加蒸餾水使體積為2.0mL，再加苯酚試液1.0mL，搖勻，迅速滴加濃硫酸
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5.0 mL，搖勻後放置5min，置沸水浴中加熱15min，取出後冷卻至室溫。以蒸餾水代替糖溶液如上法配製空白。用721分光光度計，1cm比色皿，在490nm處測定吸光度，繪制葡萄糖濃度-吸光度工作曲線。結果濃度在0.010-0.04mg/mL范圍內與吸光度呈現性關系。
回歸方程Y=7.52×10-3X+1.13×10-3, Y=0.9997(n=6)。
3.3、含量測定
3.31、多糖的提取與精製 取300mL，用氟仿多次萃取，以除去蛋白質，加活性炭1%脫色，抽濾，濾液加入95%乙醇，使含醇量達80%，靜置過夜。過濾，殘渣用無水乙醇、丙酮、乙醚多次洗滌，真空乾燥，即得粗多糖。
3.32、供試液的配製 精密稱取粗多糖粉末0.2000g
㈢ 檢驗蒸餾水和蔗糖溶液的方法
如果抄可以嘗的話~~別吧舌頭爛掉。。
首先分別取樣液於試管，向試管中滴入濃硫酸加熱（使蔗糖水解成葡萄糖），再滴入NaOH溶液中和並加入新制的氫氧化銅發生反應,出現磚紅色沉澱的那支試管里頭裝的就是蔗糖溶液。
希望我的回答對你有幫助！如有更好的辦法也請告訴我！別忘記採納哦！
㈣ 用葡萄糖固體和蒸餾水配製500g 5%的葡萄糖溶液，不需要的實驗儀器是（） A．玻璃棒 B．燒杯 C．
| 配製一定溶質質量分數的溶液所用儀器有托盤天平、葯匙、量筒、膠頭滴管、燒杯、玻璃棒，不需要漏斗； 故選C． |
㈤ 在濃度為60的葡萄糖溶液中加入250g蒸餾水溶液濃度變成20原來有多少克葡萄糖溶液
設原來有x克葡萄糖溶液.由題意,60%×x=(x+250)×20%解得x=125答：原來有125克葡萄糖溶液. 查看原帖>>
㈥ 蒸留水與葡萄糖注射液性質一樣嗎
比一樣的，蒸餾水還是水，沒有變，都是H2O，與葡萄糖注射液肯定不一樣啦
㈦ 為什麼不能用蒸餾水代替5%的葡萄糖注射液
不能來用蒸餾水代替5%的葡萄自糖注射液
因為：
等滲溶液，指的是滲透量相當於血漿滲透量的溶液。如0.9%NaCl溶液和5%葡萄糖溶液。
低於血漿滲透量的溶液稱為低滲溶液，細胞在低滲溶液中可發生水腫，甚至破裂。
高於血漿滲透量的溶液稱為高滲液，細胞在高滲溶液可發生脫水而皺縮。
㈧ 蔗糖與濃硫酸的反應 蔗糖與濃硫酸反應時,為什麼還要在蔗糖中加一些蒸餾水
C(s) 2H2SO4(濃aq)=加熱=CO2(g) SO2(g) 2H2O(i),反應條件是加熱,熱源來自濃硫酸和水反應放熱供給,故應加水.
㈨ 為什麼不可以用蒸餾水配置瓊脂糖凝膠
因為配置的瓊脂膠主要要求是達到無菌。因此普通的蒸餾水就不合適了。要採用無菌水來進行配置。這樣可以防止配置好的瓊脂中不會產生雜菌。
㈩ 葡萄糖與蒸餾水混和後有保濕作用嗎
有點