『壹』 选择分离60KDa 的蛋白选择什么种类的超滤膜想让蛋白留在浓缩液里
那就是浓缩，如果要提高回收率用10K的超滤膜
『贰』 用超滤膜（3kDa）抽滤后，如何收集滤膜上的高分子物质
这个只能清洗了，就看你截留的是什么物质，用溶剂去洗，或者也可以借助离心机。
『叁』 超滤离心管怎么使用
蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。也有其它型号的、不同体积大小和超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mg/ml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的Buffer，直到蛋白不发生沉淀为止。
5、前面几步用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。
6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作，用黄枪头（200ul）取，轻轻顺着边缘插入枪头，轻轻吹打、混匀蛋白液，注意不要碰到超滤膜，然后吸取浓缩液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取，否则难度太大，有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中，没过超滤膜，防止膜失水变干。
7、以下是处理超滤管，重复利用超滤管的步骤。
8、倒出超滤管里的水，用milliQ水轻轻润洗几次，【若管底有可见的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用枪头吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀悬起，然后倒掉，不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液，室温放置20min，期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液，将管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时，不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗，内壁再用MilliQ水洗干净。
9、取出浸没的管芯，加至接近满的MilliQ水，50ml管也加满MilliQ水，将管芯慢慢放入50ml
离心管，排出部分水，然后盖上盖子，放4度保存，直到下次使用。一般来说，按照上述步骤和注意事项，每根管用三四年不会坏。
『肆』 超滤离心管用材要求
『伍』 有《发酵脱脂大豆肽的清除和抗疲劳活性》英文文献的翻译吗
发酵脱脂大豆肽的清除和抗疲劳活性
摘 要：许多生物活性肽具有特定成分，使这些促进健康的食品存在潜在的生物学特性。越来越多的关注让我们集中研究来自大豆蛋白质的生理活性肽。在这项研究中，枯草芽孢杆菌SHZ发酵生产脱脂豆粕再用超滤和凝胶色谱进行纯化得到大豆肽。分别在体外和体内对自由基的清除和肽的抗疲劳作用进行了评价。20天的大豆肽给药后对小鼠游泳耐力进行了测试及对小鼠血乳酸和肝糖原进行了测定。结果表明，在10mg/ml的浓度显示了纯化肽（P<0.01）的超氧效力（62％）和羟基（96％）的清除作用。小鼠游泳（P <0.01）后经大豆肽给药可显着加速清除其体内的血乳酸。中，高剂量组的肝糖原储存明显增加 （P<0.05）。这表明，大豆肽发酵法生产可显着减轻老鼠的身体疲劳。
关键词：大豆肽；发酵；清除自由基；抗疲劳；脱脂大豆肽；枯草芽孢杆菌
大豆肽是一种由3-10个氨基酸残基与来自大豆蛋白水解物组成的短链肽。由于它的抗高血压和抗血栓性质等各种生物活性，它不仅被视为是一种营养物而且也作为一个人类健康的功能因子。
在不同类型的生物活性肽（免疫刺激，阿片类药物，抗微生物肽等），大豆肽与氧自由基的清除活动已被广泛研究，由脂质过氧化自由基链反应所造成的细胞或组织伤害目前被认为是各种疾病中一个最重要的诱因。疲劳是一种表明健康可能或已经受到伤害的症状。生理上，在生物胺水平疲劳能引起糖皮质激素的变化。众所周知，糖皮质激素是主要调解人应激反应和调节许多信号事件的免疫反应。因此，疲劳能引起有关生物调节，自主神经，内分泌和免疫系统各种疾病。这些疾病可导致运动强度的减少，甚至活动的中断。所以疲劳是值得现代通常在压力下的人们的关注。许多报告表明，肽在运动过程中能立即提供能量而且在广泛的运动中也是有益的。然而，没有任何有关大豆肽的抗疲劳作用的详细资料。由于大豆蛋白质具有许多不同的前体生物活性肽，有许多对商业酶制剂大豆蛋白水解大豆肽生产的研究。然而，由于它的高生产成本使它不能在发展中国家大规模的应用。很长一段时间，微生物被认为是一种好的酶原料，微生物发酵的食物蛋白质如牛奶和大豆已被证明是一种用纯化酶水解蛋白的较经济的替代方法。脱脂大豆粉富含蛋白质（40-50％），但通常在石油生产过程中被作为低价值的副产品，应作为大豆肽生产中一种良好的蛋白质来源。在本研究中，我们生产由脱脂豆粕发酵大豆肽。超滤和凝胶色谱纯化后，通过小鼠的游泳运动对大豆肽的自由基清除性能和抗疲劳的效果进行了研究。
脱脂豆粕发酵
取培养在斜面上的一圈草坪转移到含有100ml培养基（3g牛肉膏，10g蛋白胨和5g氯化钠加入1000ml的蒸馏水，PH=7.2）的250ml烧瓶中进行种子培养，在37。C下种子培养36h。发酵培养基由5％（w/ v）的脱脂豆粕组成。灭菌后，在500ml烧瓶中每100ml的发酵培养基接种10ml的种子液并在30。C下培养36h。 大豆蛋白水解物的制备
发酵后，发酵液在121。C消毒20min，以杀死微生物。发酵液中未水解的脱脂大豆粉
2
渣经5000r离心30min除去。上清收集，通过0.45um的过滤膜过滤除去杂质，收集得到大豆蛋白水解物（SPH）。 大豆肽的超滤和SPH凝胶色谱制备
三氯乙酸（TCA，0.4M）溶液中加入等体积的SPH。在室温下半个小时后不溶性蛋白经10000r离心10min除去。收集上清并用0.4M的NaOH调pH至7.0。由此产生的上清液经分馏成3种有不同的截留分子量范围（10，3，1 kDa）的超滤膜，小碎片分别通过3 kDa的膜渗透，但冻干的大豆肽不能经1 kDa的膜渗透。为进一步净化，冻干大豆肽分别溶解于去离子水（10mg/ml），装上Sephadex G-25 凝胶过滤柱(2.6*100 cm)。分离获得的去离子水在流率0.5ml/min，在220 nm处测量后洗脱组分（5ml）汇集。该柱子用蓝葡聚糖2000MW（2000 kDa)、胰蛋白酶（233kDa）、简化谷胱甘肽（GSH）（307Da）和甘氨酸(75Da)校准。该部分展示了纯化大豆肽和经体内实验冻干收集的自由基的超强的清除作用。
动物及实验饲料
96只昆明种小鼠（3周龄，20 ± 2g，雄雌数相等）由中国南京实验动物繁育中心供应。这些动物被关在一个温度控制在22±2。C，光暗循环1212h的房间里。这些动物根据南京农业大学动物科学与技术学院的动物中心的道德指引对待。该实验协议是经南京农业大学动物科学与技术学院的批准。小鼠随机分为四组，每组包括12只雌性小鼠和12只雄性小鼠。这些动物经过3d适应环境和标准的饮食后维持了20d按以下规定的饮食。
所有的动物在实验过程中被允许自由食用标准实验室颗粒饲料（由600g/kg淀粉、150g/kg酪蛋白、100g/kg蔗糖、50g/kg豆油、50k/kg纤维素、35k/kg的矿物、10k/kg维生素组成）和水。除了自由食用标准的饮食和水，第一组被指定为每天用5ml蒸馏水灌胃给药的控制剂量组（CD），第二组被指定为每天用大豆肽100mg/ml体重给药的低剂量组（LD），第三组被指定为每天用200mg/kg体重给药的中剂量组（MD），第四组被指定为每天用400mg/kg体重给药的高剂量组（HD）。每组所用的大豆肽溶解在指定浓度的蒸馏水中，然后每5ml的蒸馏水每天对小鼠灌胃。
游泳耐力实验
从各组中取出八只小鼠来，经不同剂量大豆肽给药20d后进行游泳试验，雄性小鼠和雌性小鼠数相等。每个小鼠尾巴负载着其体重5％的镀锌铁丝，然后分别把它们放到充满了水（温度：25 ± 0.5。C、深度：30cm的不同游泳箱中(90 *60 *60 cm)，对小鼠的游泳耐力进行观察。耐力时间被定义为小鼠一直保持游泳活动直到小鼠陷入游泳箱底部，并停止至少10s的移动的游泳时间。每个组小鼠的平均时间以及不同群体的数据进行T-检验。
血乳酸分析
不同剂量大豆肽给药20d后，从每个小组选出四只雌性与四只雄性小鼠进行血乳酸分析。最后大豆肽给药后从小鼠的尾静脉收集20ul血液。小鼠游泳10min后立即采集另20ul血液样本。小鼠休息20min后采集第三批血样。
大豆肽对小鼠肝糖原的影响
3
要确定小鼠的肝糖原，在最终大豆肽给药后从每组取出四只雌性和四只雄性小鼠在30。C的水中强迫游泳30min。游泳90min后，每只小鼠用高浓度丙烯酸塑料防盗乙醚麻醉致死并尽快收集其肝脏。利用蒽酮化比色法分析的方法，对不同组中小鼠的肝糖原一个接一个的直接测定。
大豆肽对小鼠体重的影响
为了进一步了解大豆肽对体重的影响，每天给小鼠称重并仔细观察它们的增长速度。小鼠经不同剂量的大豆肽给药20d后，不同组中小鼠体重的增加以T-试验进行分析。
数据分析
统计分析采用的是版本8.02的Windows SAS系统。配对的T -检验被用于所有的比较。结果表示的平均值和平均值的标准误差, 被认为是显著P<0.05。
结果与讨论
大豆肽纯化及自由基的清除活性
大豆蛋白水解物制备如上所述是用来净化和清除在每个纯化步骤中测试的自由基的活性。凝胶过滤后，根据分子的大小分离成三个峰。随着进一步的净化，部分自由基清除活性增加，第二部分池，其中三组分的结果具有最高的自由基清除活性。该纯化肽在羟基浓度为10mg/ml时显著展出清除超氧效力，超氧自由基和羟自由基清除活性大约是众所周知的自由基清除剂——生育酚的1.5倍。如超氧阴离子自由基和羟自由基的自由基在正常的新陈代谢下因缺氧而生成的连续减少。超充足的自由基引起的氧化压力，这会导致细胞损伤和组织损伤。此外，氧化应力的产生可能在许多病理条件病因中起着重要的作用。自由基清除剂是一种预防性抗氧化剂其清除活性可以作为预防增加氧化压力和疲劳恢复的征兆。在这里，我们验证了大豆肽具有超氧阴离子和羟自由基清除活性，所以肽用于在小鼠体内实验中可估计其抗疲劳的属性。 大豆肽对小鼠体重和游泳时间的影响
实验期间小鼠体重的增加。小鼠经不同剂量的大豆肽给药20d后，测量他们的体重。结果表明，实验组体重的增加与CD(P > 0.05)组相比无显着差异，因此，大豆肽对体重没有显着影响。治疗组小鼠的装载重量游泳的平均时间均显著比对照组延长。低剂量组，中剂量组和高剂量组游泳的平均时间分别增加了20.91%，45.45%和70％。这些结果表明在实验中大豆肽对小鼠的耐力具有显着影响。 大豆肽对小鼠血乳酸的影响
在游泳前、游泳后和休息20min后对小鼠的血乳酸浓度进行不同处理再测量。发现各组的血乳酸浓度在游泳前没有显著差异（P> 0.05）。然而，在游泳后，低剂量组，中剂量组和高剂量组的血乳酸浓度的比例增加均低于CD组(0.70) (P < 0.05 或 0.01)。低剂量组，中剂量组和高剂量组的比例减少分别为0.30，0.32和0.33。
在厌氧条件下血乳酸是糖酵解的碳水化合物产品，在很短的时间内糖酵解是激烈运动的主要能量来源。因此，血乳酸是衡量疲劳程度的重要指标。血乳酸比例的增加是在游泳
4
后的血乳酸增加的百分比，而游泳前，可作为疲劳程度的指标。血乳酸减少比例反映了休息20min后血乳酸的减少，代表着的疲劳程度的恢复指标。在这项研究中，数据显示，游泳后大豆肽的膳食补充剂可以有效地延缓，降低血乳酸产生和推迟疲劳的出现和加快从疲劳中恢复过来。
结论
我们的研究首次报告了脱脂豆粕发酵的生物活性肽的生产。经超滤和凝胶层析纯化后的大豆肽显示出强的清除活性，可以延长小鼠的游泳时间，有效延缓乳酸在血液中的增加 ，并增加肝糖原的储存 。因此，发酵脱脂大豆肽可以认定为是一种获取生物活性肽的潜在方法。
望采纳啊！！！！！
『陆』 分离22KD的蛋白质选择什么型号的超滤膜
如果是分离22kDa及分子量远小于它的小蛋白，推荐用millipore的超滤管，截留分子量10kDa，体积1-15ml都有。主要还是看你的目的蛋白是集中于浓缩液部分，还是滤液部分，从而选择合适的截留分子量
『柒』 超滤离心管怎么使用
蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。也有其它型号的、不同体积大小和MWCO超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mg/ml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的Buffer，直到蛋白不发生沉淀为止。
5、前面几步用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。
6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作，用黄枪头（200ul）取，轻轻顺着边缘插入枪头，轻轻吹打、混匀蛋白液，注意不要碰到超滤膜，然后吸取浓缩液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取，否则难度太大，有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中，没过超滤膜，防止膜失水变干。
7、以下是处理超滤管，重复利用超滤管的步骤。
8、倒出超滤管里的水，用milliQ水轻轻润洗几次，【若管底有可见的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用枪头吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀悬起，然后倒掉，不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液，室温放置20min，期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液，将管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时，不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗，内壁再用MilliQ水洗干净。
9、取出浸没的管芯，加至接近满的MilliQ水，50ml管也加满MilliQ水，将管芯慢慢放入50ml
离心管，排出部分水，然后盖上盖子，放4度保存，直到下次使用。一般来说，按照上述步骤和注意事项，每根管用三四年不会坏。
『捌』 国内生产陶瓷膜的企业有哪些
久吾高科是自主研发生产的陶瓷膜的