绿色木霉能净化污水吗

① 木霉中氨基酸代谢

众所周知，大多数木霉能够利用多种复杂化合物作为氮源来生长，因此，木霉应该具有同化相应化合物的酶类。在铵离子作为氮源时，许多木霉例如哈茨木霉（T.harzianum）、深绿木霉（T.atroviride）、橘绿木霉（T.citrinoviride）、绿色木霉（T.viride）、绿木霉（T.virens）和康宁木霉（T.koningii）的两种同化氨的关键酶保持很高水平，分别是谷氨酰胺合成酶和NADPH-谷氨酸脱氢酶（Ahmad et al.，1995）。哈茨木霉（T.harzianum）和深绿木霉（T.atroviride）含有单一的阴离子型谷氨酰胺合成酶、NADPH-谷氨酸脱氢酶、丙氨酸转氨酶，以及天门冬氨酸转氨酶的两种同工酶（Ahmad et al.，1995）。酪氨酸诱导型的酪氨酸转氨酶在绿色木霉（T.viride）中也有发现（Echetebu，1982），该酶将氨基转移到a-酮戊二酸上。一种推断性氨基酸透过酶的编码基因曾经从哈茨木霉（T.harzianum）克隆得到（Vasseur et al.，1995）。

跟大多数真菌一样，木霉含有一些L-氨基酸氧化酶（Smirnova et al.，1989），最近从哈茨木霉（T.harzianum）的细胞外蛋白质中分离获得一种L-氨基酸氧化酶（Th-LAAO），可以与细菌或真菌细胞壁蛋白相互作用导致菌体死亡。Th-LAAO 导致细菌膜通透性和H₂O₂的产生，是TH-LAAO的抗菌活性的机制（Yang et al.，2011a，2011b；2012）。目前，木霉中一些特定的L-氨基酸氧化酶也被分离并进行了生理生化特性的鉴定，例如L-亮氨酸-a-氧化酶（Smirnova et al.，1987a，1987b），L-蛋氨酸氧化酶（Smirnova et al.，1988），L-苯丙氨酸-a-氧化酶（Smirnova et al.，1988），以及L-赖氨酸-a-氧化酶（Kusak-abe et al.，1980；Hu et al.，1994；Weber et al.，1994；Smirnova et al.，2009；Arinbasa-rova et al.，2012 a，2012b；Pokrovsky et al.，2013）。对L-赖氨酸-a-氧化酶的研究比较详细，因为它在体外具有显著的抗增殖活性，在体内抗肿瘤治疗中起有效作用（Kusakabe et al.，1980，1988；Pokrovsky et al.，2013）。Selinheimo等（2006）利用同源性序列搜索，在丝状真菌里氏木霉（T.reesei）中发现一个新的木霉酪氨酸酶基因tyr2，这是第一次报道的分泌型真菌酪氨酸酶。里氏木霉（T.reesei）TYR2 对L-酪氨酸和L-多巴都有活性，表现出广泛的底物特异性。里氏木霉TRY2 被报道能够氧化多种肽与蛋白结合氨基酸，Westerholm-Parvinen等（2007）将TYR2在毕赤酵母中进行表达，并利用同位素标记对其理化性质进行了研究。El-Sayed（2009）描述了一种利用固态发酵在康宁木霉（T.koningii）中生产L-谷氨酰胺酶的方法。

谷氨酸脱羧酶（GAD；EC4.1.1.15）是生物催化 L-谷氨酸的 a-羧基脱羧反应生成GABA的唯一酶，广泛分布于从单细胞生物到哺乳动物的各种有机体活细胞中。在真菌中分生孢子、基内菌丝和气生菌丝中均有GAD，主要存在于分生孢子中（

et al.，2001）。

谷氨酸脱羧酶GAD已经被分离纯化，并且被证明在分生孢子培养基中表达（Hao etal.，1991，1993）。Kumar等（2000）在黑曲霉（A.niger）菌丝体中发现GABA旁路。在绿色木霉（T.viride）中 GAD 活性受发育的调控并且在非分生孢子突变体中不存在（

et al.，2001）。

等（2001）对绿色木霉（T.viride）分生孢子匀浆、液体培养物和气生菌丝中的GAD进行了测量。发现GAD受2mmEDTA刺激，对钙调素拮抗剂卡米达佐（10mm）或吩噻嗪抗精神病药（60mm）不敏感。环孢菌素A（300mm）可以在匀浆中而不是在匀浆离心后的上清中部分抑制GAD的活性。利用高离子强度、表面活性剂或尿素处理均不能提高GAD活性。而冻融却导致分生孢子匀浆中GAD酶活性增加。这些结果表明GAD是一类膜结合酶。在线粒体或空泡细胞器中GAD活性最高。液体培养中分生孢子的萌发导致GAD活性的暂时降低。延长培养后，GAD活性表现准震荡变化。因此，在绿色木霉（T.viride）中GAD的活性是与发育状况紧密联系的，并代表了分化和能量代谢之间的联系。

有关木霉合成氨基酸的研究有限。有一例研究是关于咪唑甘油磷酸脱氢酶编码基因的工作，该酶参与组氨酸的生物合成，通过酿酒酵母（S.cerevisiae）遗传互补，从哈茨木霉（T.harzianum）克隆到了其编码基因，并用作遗传转化标记（Goldman et al.，1992a）。特别引人注意的是，某些菌株能够过量产生某些氨基酸，木霉能够将DL硫代脯氨酸的72%（w/w）转化为L-半胱氨酸（Meiji Seika Kaisha Ltd.，1982）。Pitt等（1981）对黄绿木霉（T.aureoviride）在连续培养时的总氨基酸进行了系统研究，发现谷氨酸和丙氨酸是胞内含量最为丰富的氨基酸种类（60～100及43～135μmoles/g干重，介于0.06～0.20/h）。但同时发现甘氨酸、精氨酸和鸟氨酸也是主要的氨基酸种类（5～9μmoles/g干重）。大多数其他氨基酸的含量一般为1～3μmoles/g干重，生长速度快时，这些氨基酸的含量也较高（Pitt et al.，1981）。

② 人吃了绿色木霉 有什么危害吗

你好：容易诱发呼吸道系统和皮肤方面的多种疾病。食用菌木霉的危害性危害症状木霉的主要生物特征为其菌丝成熟期很短，往往在一周内即可达到生理成熟，然后即生出绿色霉层，即其孢子层。当基料被侵染后，菌丝阶段不易察觉，直到出现霉层时才能引起注意；起初只是点状或斑块状，当条件合适或食用菌菌丝不很健壮时，很快发展为片状，直至污染整个菌袋或料床，若不及时采取措施，菇棚内短时间即可成一片绿色，其孢子飞扬，周边棚墙上也将附着大量木霉孢子，给以后的生产留下严重隐患。
祝你健康

③ 木霉氨基酸及功能

蛋白质是生命功能的主要载体，而氨基酸是蛋白质的构件分子。木霉中的氨基酸可以通过缩氨酸作用产生具有抗菌活性的多肽片段，还可以由两个氨基酸水解产生具有抗生性的二酮哌嗪等氨基酸衍生物。

谷氨酸（Glu）是真核细胞中主要含氮细胞成分，是粗糙脉孢菌（Neurospora crassa）分生孢子的主要成分（Schmit et al.，1975）。在真菌中，Glu 代谢的一些方面已经被报道。例如，粗糙脉孢菌（N.crassa）和绿色木霉（T.viride）中，Glu通过Q-氨基丁酸旁路在分生孢子萌发中起重要作用（Schmit et al.，1975；Strigáˇcová et al.，2001）。谷氨酸脱羧发生在液体培养、空中生长和产孢的绿色木霉（T.viride）的指数生长期（Strigáˇcová et al.，2001）。而且，Glu作为深绿木霉（T.atroviride）的唯一碳源时，发生培养基碱性化（Hõlker et al.，1999）。Pokorny等（2004）测定了绿色木霉（T.viride）在蔗糖和谷氨酸中生长的菌丝体中U-14C标记的谷氨酸的摄取，发现以谷氨酸作为唯一碳源时，生物质产量约降低5倍。

γ-氨基丁酸（GABA）是一种非蛋白质组成的天然氨基酸，为哺乳动物中枢神经系统一种主要的抑制性神经递质，具有重要的生理功能，例如降血压、利尿、镇痛安神、改善脑机能、增进脑活力、促进长期记忆、营养神经细胞、改善更年期综合征等。GABA在神经系统的作用已被确认了几十年，与非神经兴奋组织和微生物相比，GABA在神经系统的研究是神经科学家的焦点。GABA代谢涉及原核和真核细胞代谢的各个方面。在细菌中，一些证据表明，GABA代谢参与酸性环境中的细胞内pH值调节（Castanie-Cornet et al.，1999；Ma et al.，2002）。GABA旁路也参与多胺的降解（Shaibe et al.，1985；Schneider et al.，2002）。植物可以通过GABA代谢的变化响应损伤、冷胁迫和真菌侵染（Reddy，2001；Solomon et al.，2002）。它还参与植物的发育、分化和繁殖（Gallego et al.，1995；Chen et al.，1994；Ma，2003；Yang，2003）。GABA在丝状真菌中的作用还没有被深入研究，在一些真菌中的数据也较分散。在粗糙脉孢菌（N.crassa）中，在干燥的分生孢子中GABA浓度较低，但随着分生孢子的萌发，GABA开始形成，谷氨酸脱羧酶（GAD）被激活（Schmit et al.，1975；Christensen et al.，1980）。Kaliňák等（2008）研究发现，在蔗糖中生长的绿色木霉（T.viride）提取物中γ-氨基丁酸（GABA）的含量按照年龄依赖方式减少。当真菌被转移到不含糖的培养基中时 GABA 也从菌丝体中消失。与简青霉（Penicillium simplicissimum）和构巢曲霉（A.nilans）的菌丝体相比，木霉在培养过程中GABA的水平有相似的发展。结果表明，GABA旁路不仅在真菌中是活跃的，而且受发育调控。在红褐肉座菌（H.jecorina）即里氏木霉（T.reesei）中GABA可以像其他氨基酸一样被利用（Drunina et al.，2006）。尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum）代谢和代谢组学研究表明，在厌氧条件下或谷氨酸积累的情况下 GABA 含量升高（Panagiotou et al.，2005a，2005b）。GAD在酿酒酵母（S.cerevisiae）中的异源表达和缺失表明，产生GABA的酶在防御细胞氧化中起重要作用（Coleman et al.，2001）。以上数据表明真菌中GABA代谢也参与代谢的多个领域。

④ 绿色木霉（T.viride）

T.viride成功构建的突变株系大多由物理、化学诱变获得。李忠玲等（2011）对T.viride A10进行硫酸二乙酯（DES）和微波诱变。DES处理50min可造成95%的致死率，通过反复诱变，他们筛选10株透明圈较大的菌株进行复筛，并且测试FPA酶活力，筛选了酶活最高的DES8作为最优的突变菌株。通过微波诱变，在90s反复诱变的情况下，测试筛选菌株的FPA酶活力，筛选得到WB8的酶活较高，而且比DES8提高了14.88%，cmC酶活力提高了42.37%，为优秀的突变菌株。两株突变体的遗传稳定性均良好。

陈光等（2011）成功地利用快中子对T.virideAS313711的辐照诱变高纤维素酶活性的突变体菌株。快中子具有电离密度大、能量高的特点，可在生物体内产生较高密度的次级电离，造成细胞核遗传物质DNA的合成延迟，细胞分裂受阻，进而产生染色体畸变和基因型突变，是对遗传物质的直接作用。他们研究了不同剂量下，快中子对T.viride孢子致死率和遗传稳定性的影响，结果表明，辐照剂量在016～418Gy范围内时T.viride的致死率呈逐渐上升趋势，辐照剂量为112～214Gy时，T.viride的致死率可达70.10%～80.10%，大于418Gy时，致死率接近100%。突变体后代经过选择性刚果红培养基初筛，液体发酵复筛，获得了一株正突变菌株Fn10-1，该突变体是在辐照剂量112Gy时诱变的。其产纤维素酶的CMC酶活为91414U/mL，FPA酶活为633163U/mL，比出发菌株分别提高了30～40倍。经过6世代后，突变菌株的酶活性无较大变化且能稳定遗传。研究表明，快中子突变可突破原有基因库的限制，诱发新基因或新基因组合，为木霉育种的良好的物理诱变因素。

Wang等（2009）分析了紫外诱变产生的T.viride菌株T100-14b-葡萄糖苷酶产生和供应在细胞内和细胞外水平上的特征。研究在三种实验条件下进行：①发酵过程中将pH值固定在4.8；②发酵过程中添加1mg/mL的2-脱氧葡萄糖；③不固定pH值亦不添加2-脱氧葡萄糖（对照）。研究在培养的不同阶段（分别为24h，48h，72h，96h和120h后）通过酶活性检测和电镜免疫金标签分析，得到如下结果。在pH值恒定为4.8的条件下，24h内获得到了高密度免疫金标签颗粒、最高胞内酶活性、所有酶活性和特殊酶活性。72h后，体外的和总酶活力稍有波动，但胞外最高酶活力水平仍比对照高2.7倍。相对的，在发酵液中添加一定量的2-脱氧核糖后，β-葡萄糖苷酶总活性和分泌量在培养96h时达到高峰值，其最高分泌活性比对照提升了2.05倍。此外，在pH值控制和添加2-脱氧核糖后，β-葡萄糖苷酶的分泌比率（分泌β-葡萄糖苷酶最高值/总活性最高值）几乎提升到了与真菌纤维素酶相持的水平。

Shafique等（2011）为了筛选纤维素酶高产菌株，分别采用了物理和化学诱导方法对本土T.viride菌株FCBP-142进行突变体选育，两种方法分别为紫外辐照和乙基甲磺酸诱导突变。紫外照射后，在178株突变体后代中，81个诱导株系在琼脂平板上具有较大面积的菌圈，其中Tv-UV-5.6达到了87IU/mL，相对的母本菌株为53IU/mL。乙基甲磺酸处理后，产生纤维素酶活最高的突变子Tv-Ch-4.3显示了相对于亲本异常高水平的酶活性（122.66IU/mL）。研究者又进行了稳定遗传突变子的RAPD-PCR分析，比较每个突变子与母本菌株在扩增条带大小和丰富度上的不同。分析得到的系统树图显示，突变体Tv-Ch-4.3和Tv-Ch-5.5可归为一类，而Tv-UV-5.6和Tv-UV-5.9最相近。而且，五个突变子与其母本菌株有75%的条带相似度。

T.viride的ATMT转化系统也已成功建立。孙虎等（2011a）通过农杆菌介导的T-DNA转化突变体系的建立，成功转化了绿木霉ZBS6，共获得368个突变体，转化效率达90%以上。他们通过PCR和Southern杂交分子鉴定及遗传稳定性检测确定了T-DNA插入获得的突变体可以稳定遗传，单拷贝插入率达到了80%。进一步以小麦全蚀病病原菌为供试病原菌进行了室内生防能力测定，筛选了2个具有明显生防作用的突变体，分别为T79和T124。

⑤ 木霉治理重金属污染

木霉具有超强的生存能力，可抵抗各种有机污染和重金属，且生产成本低，吸附量大。筛选对重金属尤其是复合重金属耐受性和去除率高的木霉菌株，应用于重金属污染治理，经济有效。

Morales-Barrera在2006年首次报道了在气升式生物反应器中分批培养木霉，对高浓度的铬（Ⅵ）废水进行处理，结果表明，在这种反应器中，木霉对高浓度的铬（Ⅵ）具有非凡的去除能力。铬（Ⅵ）起始浓度分别为1.3mm，1.6mm时，木霉分别培养30h和80h能完全将其去除，浓度为1.94mm时，木霉培养超过160h也不能将其完全去除，但是，对铬（Ⅵ）的总去除率很高，达到94.3%。

高永东（2008）利用耐受和吸附重金属镉效果较好的木霉突变株P6和H6与油菜联合使用，在上海市崇明区现代农业园区（上海健绿花菜专业合作社，锌、镉、铜为轻度污染）进行了田间试验（试验面积为5亩）。木霉修复剂施用剂量为15kg/亩，木霉施用与油菜播种同时进行，试验期间油菜播种两茬，取样两次，采收时计算产量。检测油菜幼苗鲜重、株高，植株体内锌、镉、铜、汞含量。通过大田试验表明，与对照相比，木霉菌修复剂能明显促进油菜生长，能促进油菜幼苗对锌、镉、铜的吸附。

智利Alhué地区受金属矿开采排放的污水污染严重，研究者在该地区选择49m²的农田进行木霉修复试验。商品化的木霉制剂施用后30d，70d，90d取样，检测土壤中各项指标，发现木霉能在高温、干旱及重金属污染严重的土壤中定殖、存活，由起始浓度670 cells/g土壤，30d时浓度为22000 cells/g土壤，40d时浓度为20000 cells/g土壤，90天时仍有19000 cells/g土壤；并能改善土壤的结构（pH、磷、钠、钙、镁等），但重金属（锌、锰、铁、铜）依然存留在土壤中，且浓度很高（Estudio，2010）。

木霉对重金属污染的生物修复，对于水体中的重金属，直接利用菌丝体进行吸附，菌丝固定化后，可对吸附的重金属进行解吸，使生物修复剂能重复利用，经济有效。但是吸附过程受外界因素及吸附剂本身的特性影响较大，如pH、温度、吸附时间、吸附剂粒径、水体中重金属的浓度等，所以要进行系统的试验，确定最佳吸附条件。木霉对土壤中重金属的去除，一般是与能耐受、吸附重金属的植物联合应用，以达到改善土壤质量，促进植物对金属的吸附，通过收割植物，使土壤中重金属浓度降低。这种方法费用低，操作简单，不产生二次污染，具有广泛的应用前景。

以前的研究主要集中于耐受菌株筛选、影响因素等方面，木霉与重金属结合反应的机理，反应的动力学及热力学特性需要更加深入的研究，开发新型的、方法简单的处理工艺及反应器，以满足越来越严重的重金属污染治理需求。

结语

木霉菌为好氧性丝状真菌，广泛存在于土壤中，大多数的木霉菌菌株具有较强的超寄生能力，能够存在于植物残体和土壤组织内，并且与植物互作，促进植物生长，抑制病害发生或者调控重金属污染作用。

在重金属污染场所分离到的对重金属耐受性高、去除率高的木霉菌株，通过研究其最佳降解条件，可直接用于重金属污水处理，或与植物/微生物联合用于土壤重金属污染治理，是一种费用低、简单可操控的技术，具有巨大的经济效益、社会效益及生态效益。

但是，目前的研究多集中于实验室内，真正的示范推广很少，而且没有相应的治理参考标准，因此还需要研究人员的不断探索，使重金属污染的木霉修复早日得到推广应用并规模化。

⑥ 什么是绿色木霉

木霉菌属于半知菌亚门、丝孢纲、丝孢目，粘孢菌类，是一类普遍存在的真菌。绿色木霉是木霉菌中具有重要经济意义的一种， 目前在工业、农业和环境科学等方面有着广泛的用途。绿色木霉在自然界分布广泛，常腐生于木材、种子及植物残体上。绿色木霉能产生多种具有生物活性的酶系，如：纤维素酶、几丁质酶、木聚糖酶等。绿色木霉是所产纤维素酶活性最高的菌株之一，所产生的纤维素酶的降解作用， 目前日益受到重视，国内外对这方面的研究也很多。同时，绿色木霉又是一种资源丰富的拮抗微生物，在植物病理生物防治中具有重要的作用。

⑦ 木霉有何特征怎样防治

木霉（Trichoderma spp.）又名绿霉，为害银耳的主要是绿色木霉（T.viride）、康氏木霉（T.viride）、粉绿木霉（T.glaucum）和多孢木霉（T.polysporum）、长梗木霉（T.longibrachiatum），是竞争性杂菌之一。

（1）形态特征

木霉菌丝生长浓密，初期呈白色斑块，逐步会产生浅绿色孢子。菌落中央为深绿色，向外逐渐变浅，边缘呈白色；后期变为深黄绿色、深绿色，会使培养基全部变成墨绿色。菌丝有隔膜，向上伸出直立的分生孢子梗，孢子梗再分成两个相对的侧枝，最后形成梗。小梗顶端有成簇的分生孢子。两种木霉形态见图27。

图27 木霉

1.绿色木霉 2.康氏木霉

（2）发生与危害

木霉菌为竞争性杂菌，又是寄生性的病原菌。它既能寄生于银耳的菌丝和子实体，又有分解纤维素和木质素的能力。木霉菌丝接触寄主菌丝后，能把寄主的菌丝缠绕，切断；还会分泌毒素，使培养基变黄消解。木霉菌适于在15～30℃温度和偏酸性的环境中生长。常发生在银耳菌种和栽培袋的培养基内，也侵染在子实体上。它与银耳争夺养分和生存空间。受其侵染后，养分被破坏，严重的使培养基全部变成墨绿色，发臭变软，导致整批菌袋腐烂；子实体受其侵染后发生霉烂，给栽培者带来严重损失。

（3）防治方法

注意清除培养室内外病菌滋生源，净化环境，杜绝污染源；培养基灭菌必须彻底，接种时严格执行无菌操作；菌袋堆叠要防止高温，定期翻堆检查；出耳阶段防止喷水过量，注意耳房通风换气。如在菌种培养基上发现绿色木霉时，这些菌种应立即淘汰。如在菌袋料面发现绿霉菌，可用5%石炭酸混合液，或用75%百菌清可湿性粉剂1000～1500倍溶液等药剂注射于受害部位；污染面较大的采取套袋，重新进行灭菌、接种。幼耳阶段发现被害，可用75%福美双可湿性粉剂1000～1500倍溶液局部喷洒受害处。成耳期发现被害时，提前采收，避免扩大污染。

⑧ 灵芝绿色木霉频发，灵芝绿色木霉危害是什么

绿色木霉是产生频率和伤害水平最大的，在灵芝种植的每个环节均可产生，可以说破坏性、毁灭性的病虫害和霉菌，比较严重危害着灵芝的生产量和品质，是灵芝种植中病虫害预防的关键，下边大家就一起来看一看灵芝绿色木霉预防方式吧！

灵芝绿色木霉形状特点

绿色木霉是菌丝苗条没有颜色，具隔开，多发枝。分生孢子梗从菌丝的枝条上长出，对生或共生，一般有2～3次发枝，着生分生孢子的小梗瓶形或锥形。分生孢子多见球形，孢壁具小疣突，绿色或蓝绿色。在PDA培养液上菌体初为白絮状物，后为暗绿色。

适度增加接种量，可使灵芝菌丝以较大优势快速攻占底盘，降低霉菌的环境污染，具有以菇抗菌的功效。

确保塑造房间内具备适合的微气候，把好菌丝塑造关，操纵25℃上下的温度和60～70％的环境湿度，留意通风换气，坚决杜绝高温高低温，造就灵芝菌丝生长的最适合自然环境标准，推动灵芝菌丝迅速生长，快速攻占全部料面。

灵芝原基长出后，要立即拔掉棉塞或开袋，以防原基毁坏而感染绿色木霉菌。搞好隔热保温保湿补水工作中，与此同时提升通风和给予一定的阳光照射，促进原基健康地成长为子囊孢子，子囊孢子完善后立即采收。

⑨ 绿色木霉的详细介绍。。。急急急。。。

木霉菌属于半知菌亚门、丝孢纲、丝孢目，粘孢菌类，是一类普遍存在的真菌。绿色木霉是木霉菌中具有重要经济意义的一种， 目前在工业、农业和环境科学等方面有着广泛的用途。绿色木霉在自然界分布广泛，常腐生于木材、种子及植物残体上。绿色木霉能产生多种具有生物活性的酶系，如：纤维素酶、几丁质酶、木聚糖酶等。绿色木霉是所产纤维素酶活性最高的菌株之一，所产生的纤维素酶的降解作用， 目前日益受到重视，国内外对这方面的研究也很多。同时，绿色木霉又是一种资源丰富的拮抗微生物，在植物病理生物防治中具有重要的作用。它的作用机制有以下几种：产生抗生素；重寄生作用，这是木霉菌作为拮抗菌最重要的机制；溶菌作用；竞争作用。

⑩ 绿色木霉对灵芝栽培有什么为害如何防治

在灵芝栽培中绿色木霉是发生频率和为害程度最高的，在灵芝栽培的各个阶段均可发生。绿色木霉可以和栽培的灵芝菌丝竞争养料，消耗养分，也可以分泌毒素破坏灵芝菌丝的细胞质，抑制灵芝菌丝的生长，严重影响着灵芝的产量和质量，是灵芝栽培中病害防治的重点。污染初期表现不明显，中后期逐渐由白变绿，杂菌菌丝密集，产生绿色粉状物，灵芝菌丝逐渐死亡，整根菌木或菌袋会被污染，剖开可见空隙处有绿色粉状物。

防治：注意栽培环境的清洁卫生。严格选料。培养料要求新鲜、无霉变，用前要曝晒数天。灭菌要求彻底。接种严格无菌操作。保证培养室内具有适宜的小气候，温度控制在25℃左右，60%～70%的湿度，注意通风换气，创造灵芝菌丝生长的最适宜环境条件。特别注意出芝阶段的培养管理工作，加强早期防治。定期检查生长情况，一旦发现污染，应采取有效措施，控制绿色木霉的生长、蔓延。菌丝体生长阶段若发现料面有绿色木霉污染，可采用石灰水擦洗患处，或用石灰浆封杀；如子实体感染绿色木霉，应及时摘除，以防蔓延。