我在做deae纖維素離子交換層析吸光度的峰寬有什麼意義

㈠ DEAE纖維素柱的原理

DEAE纖維素柱原理，基於離子交換層析：離子交換層析中，基質是由帶有電荷的樹脂或纖維素組成。

陰離子交換基質結合，帶有負電荷的蛋白質，然後這類蛋白質被留在柱子上，然後通過提高洗脫液中的鹽濃度等措施，將吸附在柱子上的蛋白質從而洗脫下來。

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基本信息：

性狀：乾燥纖維狀。

用途：用於柱色譜分析，用以分離提純多糖、肽、核苷酸、酶、血清組分和病毒等，陰離子交換填料。

保存：常溫乾燥封袋保存。

DEAE—纖維素的使用方法：

稱取IgDEAE32或52，放入5ml量筒中，加蒸餾水浸泡過夜，觀察溶脹後DEAE的體積。根據所需層析柱的柱床體積計算所需DEAE的用量，稱取所需DEAE用蒸餾水浸泡過夜，其間換幾次水，每次除去細小顆粒。

抽干，改用0.5mol/LNaOH溶液浸泡1h以上，抽干（可用布氏漏斗），用無離子水漂洗，使pH至8左右（用pH試紙檢查）。再改用0.5mol/LHCl溶液浸泡1h以上，去酸溶液，用無離子水洗至pH6左右。本實驗中在用前應以0.0175mol/L，pH6.7磷酸鹽緩沖液，浸泡平衡後使用。

㈡ DEAE纖維素柱的原理

DEAE-纖維素為二乙氨乙基纖維素,是陰離子交換劑.其原理基於離子交換層析：離子交換層析中,基質是由帶有電荷的樹脂或纖維素組成.由於蛋白質也有等電點,當蛋白質處於不同的pH條件下,其帶電狀況也不同.陰離子交換基質結...

㈢ 離子交換纖維素色譜法的實驗操作

（一）交換劑的處理，再生與轉型
新出廠的樹脂是干樹脂，要用水浸透使之充分吸水膨脹。因其含有政績一些雜質，所要要用水、酸、鹼洗滌。一般手續如下：新出廠干樹脂用水浸泡2小時後減抽壓去氣泡，傾去水，再用大量無離子水洗至澄清，去水後加4倍量2N HCl攪抖4小時，除去酸液，水洗到中性，再加4倍量2N NaOH攪抖4小時，除鹼液，水洗到中性備用。將樹脂帶上所希望的某種離子的操作稱為轉型。如希望陽樹脂帶Na+，則用4倍量NaOH攪拌浸泡2小時以上；如希望樹脂帶H+，可用HCl處理。陰樹脂轉型也同樣，若希望帶Cl-則用HCl，希望帶OH-則用NaOH。用過的樹脂使其恢復原狀的方法稱為再生。並非每次再一都用酸、鹼液洗滌，往往只要轉型處理就行了。
（二）柱上操作
⑴交換劑裝柱最簡單的交換層析柱可用鹼式滴定管代替。處理過的樹脂放入燒杯，加少量水邊攪拌邊倒入保持垂直的層析管中，使樹脂緩慢沉降。交換劑在柱內必須分布均勻。
⑵上樣向層析柱內傾入樣品液⑶洗脫與收集
不同樣品選用的洗脫液不同。原則是用一種比吸著物質更活潑的離子，把吸著物交換出來。由於被吸著的物質往往不是我們所要求的單一物質，因此除了正確選擇洗脫液外還采控制流速和分布收集的方法來獲得所需的單一物質。

㈣ DEAE纖維素柱層析分離多糖的過程中遇到了很多問題，請做過的同學看看我的問題出在哪裡，謝謝謝謝。。。。

.1...DEAE是要先泡，然後鹼酸鹼的順序洗滌的， 每次都要洗滌到中性才能進行下一個步驟，你洗滌的時候可以使勁的攪拌， 然後靜置。麻煩你多泡 多攪拌。自然會開的
2如果靜置上面還有漂浮物可以考慮不要！
3，你要多看資料，人家抽濾只是為了抽干（不是絕對的干），然後方便換水洗滌，這樣能減少靜置時間，所以不是絕對的干啊，你給抽濾的漏斗底下加上濾紙。
4. 經過這些處理後肯定是會 沉澱的，我覺得你是急性子，這些東西和後來你需要的凝膠裝柱子都是濕法裝住，都需要慢慢裝，過一會才會沉澱下來，不要看你隨便倒一些進柱子，就感覺已經滿了，你過一會看就發現，在柱子最底下其實只慢慢沉澱了一點。

㈤ DEAE纖維素離子交換柱後面的數字意義

DEAE-纖維素 DEAE cellulose DEAE-纖維素 DEAE cellulose 二乙氨乙基纖維素陰離交換纖維素 DEAE—纖維素化：稱取IgDEAE32或52放入5ml量筒加蒸餾水浸泡夜觀察溶脹DEAE體積根據所需層析柱柱床體積計算所需DEAE

㈥ 請問羧甲基纖維素和DEAE纖維素分離蛋白有什麼區別

羧甲基纖維素是弱陽離子交換填料，要求使用時的pH值要低於目的蛋白質等電點起碼0.5個pH值單位，為了達到較好的分離效果，實際使用時最好是低於1個以上pH值單位。在低pH值下，有的不耐酸的雜質蛋白質會變性，屆時離心除去，可首先去除一部分雜質蛋白質。
DEAE纖維素是弱陰離子交換層析填料，要求使用時的pH值要高於目的蛋白質等電點起碼0.5個pH值單位，為了達到較好的分離效果，實際使用時最好是高於1個以上pH值單位。大多數蛋白質的等電點在6.0左右，可以耐受8.0，所以依據pH提高使得某些雜質蛋白質變性的做法多數情況下不可行。
這兩種填料的工作pH值不同，但都可以用氯化鈉來洗脫。交換基團不同，分離效果也不同，可以先用一種來純化，得到初步純化的產物之後再用另一種來純化。因為有些蛋白質不能耐受酸，所以我建議先用羧甲基纖維素弱陰離子交換層析，再用DEAE纖維素弱陽離子交換層析，產物的純度比單用一種時更高。
在對蛋白質的破壞方面，弱交換填料比強交換填料好，有的蛋白質用強離子交換來純化，蛋白質結合再交換之後會損失很多活力，但是弱離子交換則損失的活力較少。但是弱離子交換的解析度比強離子交換差一些。如果純化得不好，又有強離子交換的，就試一下吧。lxj341401(站內聯系TA)一個是陽離子交換填料，一個是陰離子交換填料，用哪個跟蛋白值的等電點pI還有所用緩沖液的pH有關，pH>pI時帶負電荷，蛋白質能吸附到陰離子交換填料，相反的用陽離子交換。所以能不能代替看具體情況了。悅迷008(站內聯系TA)Originally posted by 冼亮澱粉酶 at 2011-07-15 06:00:21:
這兩個填料雖然都是離子交換用的，但一個是弱陰一個是弱陽，效果不同，沒有一個能代替另一個的說法。

㈦ DEAE-纖維素陰離子柱層析分離多糖的原理是什麼

DEAE纖維素陰離子柱層板分離多糖的原理主要是其可吸附離子型物質，比如蛋白質、酸性多糖等，而作為大多數的中性多糖則可順利流出，從而去粗取精、達到分離的目的。當然，DEAE的細度很細，也可起到分子篩的作用，但其分離效果會和柱高、洗脫溶劑、粒徑的關系很大，效果並不很好，且在大量水沖的情況下，中性多糖基本均可洗脫下來。

㈧ DEAE纖維素

DEAE—纖維素的再生

用過的離子交換劑可以反復使用，使其恢復原狀的方法俗稱「再生」。再生並非每次用酸、鹼反復處理，通常只要「轉型」處理即可。所謂轉型就是使交換劑帶上所希望的某種離子，如希望陽離子交換劑帶上NH+4則可用NH4OH浸泡，如希望陰離子交換劑帶上Cl—則用NaCl溶液處理。

㈨ 寡聚dT-纖維素柱層析的用處

飛秒檢測發現sephadex
g-25層析柱填料是葡聚糖交聯的凝膠柱，g-x,
x：（1）交聯度。x越小，交聯度越大，網孔越小，適用於分離低分子量產品，反之亦然。（2）吸水量。為凝膠得水值的10倍.例如,g-25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克.凝膠柱使用一次後，必須反沖疏鬆一次，平衡後再使用。若使用數次，就需要再生處理。用0.1mol/l
naoh-0.5mol/l
nacl溶液浸泡，然後用蒸餾水洗至中性備用。若實驗完畢，將再生後的凝膠在布氏漏鬥上用蒸餾水洗滌抽干，再用95%乙醇洗兩次，在60℃烘箱中烘乾，回收保存。
deae-纖維素為二乙氨乙基纖維素，是陰離子交換劑。基質是由帶有電荷的樹脂或纖維素組成。離子交換層析中，基質是由帶有電荷的樹脂或纖維素組成。帶有正電荷的稱之陰離子交換樹脂；而帶有負電荷的稱之陽離子樹脂。離子交換層析同樣可以用於蛋白質的分離純化。由於蛋白質也有等電點，當蛋白質處於不同的ph條件下，其帶電狀況也不同。陰離子交換基質結合帶有負電荷的蛋白質，所以這類蛋白質被留在柱子上，然後通過提高洗脫液中的鹽濃度等措施，將吸附在柱子上的蛋白質洗脫下來。結合較弱的蛋白質首先被洗脫下來。反之陽離子交換基質結合帶有正電荷的蛋白質，結合的蛋白可以通過逐步增加洗脫液中的鹽濃度或是提高洗脫液的ph值洗脫下來。離子交換劑的再生與保存離子交換劑可在柱上再生。如離子交換纖維素可用2mol/：nacl淋洗柱，若有強吸附物則可用0.1mol/lnaoh洗柱；若有脂溶性物質則可用非離子型去污劑洗柱後再生，也可用乙醇洗滌，其順序為：0.5mol/lnaoh-水-乙醇-水-20%naoh-水。保存離子交換劑時要加防腐劑。對陰離子交換劑宜用0.002%氯已定（洗必泰），陽離子交換劑可用乙基硫柳汞（0.005%）。有些產品建議用0.02%疊氮鈉。
兩種填料的抗酸鹼性和抗腐蝕性能不同。

㈩ DEAE 層析原理是什麼

給你找了以前的文章，你可以看一下。如下。。
層析技術是以離子交換纖維素或以離子交換葡聚糖凝膠為固定相，以蛋白質等樣品為移動相，分離和提純蛋白質、核酸、酶、激素、多糖等的一項技術。
在纖維素與葡聚糖分子上結合有一定的離子基團，當結合陽離子基團時，可換出陰離子，則稱為陰離子交換劑。如二乙氨乙基(Dicthylaminoethyl，DEAE)纖維素。在纖維素上結合了DEAE，含有帶正電荷的陽離子纖維素—O—C6 H14N+H，它的反離子為陰離子(如Cl-等)，可與帶負電荷的蛋白質陰離子進行交換。當結合陰離子基團時，可置換陽離子，稱為陽離子交換劑，如羧甲基(Carboxymethy， CM)纖維素。纖維素分子上帶有負電荷的陰離子(纖維素－O－CH2－COO一)，其反離子為陽離子(如Na+等),可與帶正電荷蛋白質陽離子進行交換。
溶液的pH值與蛋白質等電點相同時，靜電荷為0，當溶液pH值大於蛋白質等電點時，則羧基游離，蛋白質帶負電荷。反之，溶液的pH值小於蛋白質等電點時，則氨基電離，蛋白質帶正電荷。溶液的pH值距蛋白質等電點越遠，蛋白質的電荷越多。反之則越少。血清蛋白質均帶負電荷，但各種蛋白質帶負電荷的程度有所差異，以白蛋白為最多，依次為 球蛋白， 球蛋白和 球蛋白。
在適當的鹽濃度下，溶液的pH值高於等電點時，蛋白質被陰離子交換劑所吸附；當溶液的pH值低於等電點時，蛋白質被陽離子交換劑所吸附。由於各種蛋白質所帶的電荷不同。它們與交換劑的結合程度也不同，只要溶液pH值發生改變，就會直接影響到蛋白質與交換劑的吸附，從而可能把不同的蛋白質逐個分離開來。
交換劑對膠體離子(如蛋白質)和無機鹽離子(如NaCl)都具有交換吸附的能力，當兩者同時存在於一個層析過程中，則產生競爭性的交換吸附。當Cl一的濃度大時，蛋白質不容易被吸附，吸附後也易於被洗脫，當Cl一濃度小時，蛋白質易被吸附，吸附後也不容易被洗脫。因此，在離子交換層析中，一般採用兩種方法達到分離蛋白質的目的。一種是增加洗脫液的離子強度，一種是改變洗脫液的pH值。pH值增高時，抑制蛋白質陽離子化，隨之對陽離子交換劑的吸附力減弱。pH值降低時，抑制蛋白質陰離子化，隨之降低了蛋白質對陰離子交換劑的吸附。當使用陰離子交換劑時，增加鹽離子，則降低pH值。當使用陽離子交換劑時，增加鹽離子濃度，則升高溶液pH值。