『壹』 免疫組化用中性樹脂才用二甲苯透明嗎
二甲苯的作用是脫脂和透明，如果不用可能會產生組織染色效果差，細胞腫脹，鏡下觀察組織結構模糊，染色過程易產生掉片的現象。
『貳』 怎麼溶解中性樹膠
二甲苯，有毒 小心
『叄』 怎麼溶解已封藏的石蠟切片的中性樹膠
一般是不能溶解的,但你可以使用濃硫酸,不過會部分損壞石蠟
『肆』 中性樹膠是怎麼配製的
（中抄性樹膠）就是醫院病理科襲把載玻片和蓋玻片粘合在一起，把生物組織切片封起來長久保留的粘合劑。
它有幾個特點符合物鏡粘合劑的需求：1.透明度高，幾乎和光學玻璃一樣清晰。 2.不腐蝕玻璃，因為它是中性的，而玻璃最怕鹼性，如果不放心可以在粘合以前用鹽酸酒精泡泡晾乾再粘可能會更好。 3.不容易長霉，可能是因為中性樹膠的溶劑二甲苯有殺黴菌作用。
我找出一些20年的玻片，一點黴菌也沒有，在二甲苯里泡幾小時後推動蓋玻片從載玻片上滑開，發現載玻片和蓋玻片一樣清晰光亮沒有被腐蝕的痕跡。
不過中性樹膠可能有些缺點，它是以二甲苯為溶劑的，封合後容易揮發很慢，我製作的玻片起碼在通風處晾一兩個月才沒有二甲苯的味道。可能在烈日下暴曬會快點。
封合方法很簡單，在一塊鏡片中央滴2-3滴樹膠液（注意要滴在一起否則容易有氣泡），然後把另一塊鏡片慢慢放上去，輕輕擠壓，樹膠液會向外側擴散至整個鏡片，通風晾幾個小時後用棉球粘上二甲苯或者松節油把鏡片邊緣多餘的樹膠擦洗干凈。然後再放在通風處晾2個月。
『伍』 中性樹脂封片用什麼溶解中性樹脂
可以試試飛秒實驗室的脫膠劑，或則脫漆劑，都可以，或者你自己用醇試試
『陸』 離子交換柱層析中樹脂為什麼中性
離子交換柱層析中樹脂為什麼中性
1離子交換樹脂性能降解原因
樹脂在內長期使用中，性能容會逐漸下降，表現為出水（即產品）質量降低。影響樹脂性能降解的因素很復雜，如樹脂體積減少，交換能力下降，球粒裂紋增多，破碎流失等，造成上述現象的原因不外是：
（1）脹縮內應力不均。在使用中樹脂內部由於溶脹及收縮變化的不均勻，局部結構中應力不平衡，造成斷鏈裂解。
（2）氧化破壞。體系中的氧化劑，包括酸、鹼、溶劑等對樹脂骨架及功能基的破壞。
（3）雜質污染。水中雜質堵塞了樹脂的內部孔道，阻擋交換吸附。
2離子交換樹脂使用前為什麼要進行預處理
新樹脂常含有反應溶劑、未參加反應的物質和少量低分子量的聚合物、鐵、鉛、銅等雜質。當樹脂與水、酸、鹼或其它溶液相接觸時，上述可溶性雜質就會轉入溶液中，在使用初期污染出水水質。因此，新樹脂在投運前要進行預處理，轉換為指定的離子型式。
『柒』 什麼是單組份樹脂，什麼是雙組份是樹脂怎麼區別單，雙組分樹脂
單組分環氧樹脂一般是潛伏型環氧樹脂，環氧樹脂中已經加入了固化劑或催化劑，在一定的條專件下（如高溫、濕屬度、紫外輻射等）可完成固化反應。
雙組分是樹脂與固化劑分開的。一般常溫可固化。
醇酸，丙烯酸，環氧，氨基，聚酯，聚氨酯樹脂，這些樹脂要看它們派什麼用途，它們可以是單組分，也可以是雙組分或多組分，用途不同組分形式也不同。最常見環氧樹脂一般是雙組分使用。
『捌』 怎樣用中性樹脂封片
晾乾後滴在上面兩滴中性樹脂然後放蓋玻片，輕壓蓋玻片讓液滴充滿整個玻片，然後晾乾，最好晾一個星期再看，不然容易脫落。當然不用油鏡的話應該就不用晾那麼久了。
『玖』 中性樹脂有毒嗎
樹脂本身基本沒有毒性。
但它容易裂解成甲苯、二甲苯、三甲苯、四甲苯...
苯類有毒，長時間接觸或呼吸，會出現中樞神經麻醉的症狀，輕者頭暈、惡心、胸悶、乏力，嚴重的會出現昏迷甚至因呼吸循環衰竭而死亡。
如果您的工作環境有大量古馬隆樹脂的話，一定要注意通風，尤其是夏季高溫時段萜烯樹脂是一些熱塑性嵌段共聚物具有色淺、低氣味、高硬度、高附著力、抗氧化性和熱穩定性好，相容性和溶解性好等優點，特別eva系sis系，sbs系等熱溶膠中具有優良的相容性和耐候性及增粘效果。其產品廣泛應用於膠粘劑、接著劑、雙面膠帶、溶劑型膠水、書本裝訂版、色裝、膠布、烯烴膠布、牛皮紙卡膠布、膠帶 標簽、木工膠、壓敏膠、熱溶膠、密封膠、油漆和油墨及其它聚合物改質劑等方面。
古馬隆樹脂為粘稠液體或是固體，相對密度1.05～1.15；液體相對密度1.05～1.07。軟化點75~135℃。玻璃化溫度56℃。折射率1.60~1.65。碘值一般為23~39 g12/100g。外觀像松香，溶於氯代烴、酯類、酮類、醚類、烴類、多數樹脂油、硝基苯、苯胺類等有機溶劑，不溶於水及低級醇。耐酸鹼、耐水性優良。電絕緣性、耐老化性、耐熱性良好。呈中性反應。具有熱塑性、耐腐蝕性。耐光性較差。可燃。無毒！
『拾』 he染色可以不加中性封固樹脂觀察嗎
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一 取材和固定
取材後經固定24小時（4%PA灌注取材的後固定6~8小時）以後，流水沖洗24小時，置於70%~80%乙醇中，可長期保存。
二 脫水和包埋
1、95%ALC（二道） Ⅰ 2~4h
Ⅱ 2h
2、無水ALC（二道） Ⅰ 1.5h
Ⅱ 1h
3、二甲苯+無水乙醇（1：1） 20min
4、二甲苯（二道） Ⅰ 10min
（註：脫水透明esp.透明時間可適當延長） Ⅱ 10min
5、浸軟蠟（50~52℃）（二道） Ⅰ 30min
Ⅱ 1h
6、浸硬蠟（58~60℃）（二道） Ⅰ 30min
Ⅱ 30min
7、包埋：注意溫度、切面。
三 切片
修、切、展、貼、烤（烤片55~60℃） 3~10h
四 HE染色
1、二甲苯脫蠟 五道，每道5~10分鍾
2、無水乙醇 Ⅰ 5min
Ⅱ 5min
3、95%乙醇 Ⅰ 5min
Ⅱ 5mn
4、80%乙醇 5min
5、70%乙醇 5min
6、D．W． 3~5min
7、Harris蘇木素液 5min（冬天可適當延長，eg.20min）
8、水洗
9、0.5%鹽酸酒精分色 3~10seconds，鏡下觀察
10、水洗藍化 15~30min（注意換水）
11、70%乙醇 5min
12、80%乙醇 5min
13、伊紅液（95%乙醇溶液） 3~30seconds
14、95%乙醇 Ⅰ 1min
Ⅱ 5min
15、無水乙醇 Ⅰ 5min
Ⅱ 5min
16、二甲苯+乙醇（1：1） 5min
17、二甲苯 Ⅰ 5min
Ⅱ 5min
Ⅲ 5min
18、中性樹膠封片。
HE染色注意事項：
染色時調節pH值很重要。如果組織塊在福爾馬林中固定時間長，組織酸化而影響細胞核著色。因此，要在自來水中沖洗時間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min，這樣可以使細胞核著色較深。染伊紅時胞漿著色不佳，可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。
2. 切片染蘇木精後，分色這一步是關鍵，應在顯微鏡下控制進行，一般以細胞核染色清楚（晰）而細胞質基本無色為佳。如果過分延長分色時間將導致染色太淺，應重新染色後再行分色。
3. 切片經酒精脫水後，入二甲苯時可出現白色不透明狀態，此為脫水不徹底，應將切片退回無水酒精，更換酒精、二甲苯，以求徹底脫水與透明。
4. 在染色過程中不要讓切片乾燥，以免切片收縮、變形，影響神經元形態。
5. 切片從二甲苯取出或進入二甲苯前，切片周邊均應擦乾凈或吸干多餘水分。
6. 最後封固時，要用中性樹脂，防止日後褪色，蓋片要選大於組織塊的面積，如漏出一部分不久將會褪色，所用樹脂濃度要適當，樹脂封固時不能有氣泡。
蘇木精—伊紅染色法簡稱HE染色法，它是最常用的普通染色方法。蘇木精（hematoxylin）是陽離子染料，將細胞核內的嗜鹼性物質染成藍紫色。伊紅（eosin）是陰離子染料，將細胞質和膠原纖維等染成粉紅色。